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无
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100
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玉研
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现货
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12个月
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敬请来电咨询
微量注射泵,动物微量给药注射泵,适合大鼠小鼠兔子等小动物,可配合PE导管使用;精度高,操作方便,可靠耐用,敬请来电咨询。
LSP型注射泵的主要特点:
· 具备注射器内径输入功能:可从列表中选择注射器或者直接输入注射器内径;
· 人机界面友好:大屏幕液晶显示,数码旋钮于薄膜按键配合使用,操作简便,快捷;
· 工作模式:单推工作模式;
· 带掉电记忆功能;
· 堵车保护功能:当工作过程中注射泵的推进机构被堵死,注射泵会停止推进机构的工作发出鸣笛警报;
· 采用485通讯总线可与上位机相连,通过后台软件对其进行控制;
· 外控接口:具备输入/输出控制功能;
· 液量校准功能:通过校准程序可得到更精确的流量;
· 注射器保护功能:通过调整限位块位置,可以防止注射器受损;
LSP型注射泵的主要技术指标:
· 精密注射泵SLP01-2A工作模式:注射
· 通道数量:1
· 最大行程:140mm
· 行程分辨率:0.03125μm
· 线速度范围:1μm/min-13mm/min(流量=线速度×注射器内截面积)
· 线速度调节分辨率:1μm/min
· 行程控制精度:误差≤±0.5%(行程≥最大行程的30%时)
· 额定线性推力:>90N
· 注射器选择:内置主要厂家、主要型号注射器供选择
· 注射器自定义:可直接输入注射器内经
· 流量校正:通过校正程序获得更为精确的液量
· 运行参数设置:分配液量、注射时间等
· 显示参数选择:液量、流量或线速度
· 掉电记忆:重新上电后可选择是否按照掉电前的状态继续进行工作
· 状态信号输出:2路OC门信号输出,用于指示启/停和方向状态
· 控制信号输入:2路启停控制输入端,1路下降沿触发信号控制启停;1路TTL电平信号控制启停
· 通信接口:RS485
· 外形尺寸:280×210×140(mm)
· 重量:3.6kg
· 使用电源:AC 90V-260V/15W
· 工作环境温度:0℃-40℃
· 工作环境相对湿度:<80%
多种型号可选:
型号:810型
· 最小夹持5ml注射器;
· 使用5ml注射器时的注射速度:0.1-150ml/h,每级增量为0.1ml/h

型号:810T型
· 最小夹持5ml注射器;
· 两通道配置,2个注射器可单独设置开关和注射速度;
· 使用5ml注射器时的注射速度范围:0.1-150ml/h,每级增量为0.1ml/h
型号:LSP-01
· 单通道配置;
· 最小夹持10微升注射器,最小注射速度:0.0002μm/min
型号:LSP-02
· 可同时夹持2个注射器
· 最小夹持10微升注射器,最小注射速度:0.0002μm/min
型号:LSP10
· 可同时夹持10个注射器
· 最小夹持10微升注射器,最小注射速度:0.0002μm/min
Fusion 6000 高压注射泵设计用于计量粘性溶液和半固体材料在压力下以微流体泵精度进行注射。
具有以下独特功能:700 lb 线性推力、附加注射器加热器、附加压力传感器、附加 4 注射器架、填料底部。
· 能够抵抗高压力;
· 带加热注射器功能;
· 监测和控制注射器内的压力;
· 模块化设计,可将注射器数量增加到四个并轻松调整推块位置;
· 采用全玻璃触摸屏界面和重型机械金属结构,耐化学腐蚀、易于清洁;
· 在绝大多数类型的实验室和工业环境中都具有很高的耐用性;

型号:Fusion 6000
主要特色:
· 适合高压应用
· 带温度和压力控制选项
· 用于轻松调整注射器的 Prime Buttons
· 可容纳5mL 至 300mL的不锈钢注射器
· 流速从 0.0001 mL/min 到 408 mL/min
· 通过触摸屏、USB、RS232、TTL 控制
· 包括免费可编程模式
· 免费的 LABVIEW和MATLAB驱动程序
敬请关注玉研仪器微信号

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文献和实验1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
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5. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.
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9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.
12. Hruška-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.
14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
实验动物的注射给药法是指由注射器将无菌药液或生物制剂注入组织、血管或体腔中,达到预防、治疗、协助检查、维持正常生理功能以及减轻痛苦不适的目的。常用的注射给药法包括腹腔注射、尾静脉注射、椎管内注射、脑室注射法等。
我的实验动物注射(包括皮下、肌注和腹腔) 标准操作规程(SOP)
名称:___实验动物注射(包括皮下、肌注和腹腔)__ 标准操作规程(SOP)关键词:皮下注射,肌肉注射,腹腔注射目的:规范实验动物注射操作,避免操作不当造成人员受伤或实验室感染主体内容:1、注射器用前要确证针头是否牢固安装,避免注射用力大时针头脱落形成气溶胶。2、抽吸微生物悬液时尽量减少泡沫产生,推出气体时必须用棉球包住针头,不得对空排气。3、动物必须固定后才能注射,注射时如出现受阻应该换部位并检查原因不得过分用力推动针拴。4、注射前后应用碘酊消毒注射部位,防止注射悬液污染皮毛后产生气溶胶造成
给动物注射四氧嘧啶后,由于胰腺兰氏小岛的β细胞遭到破坏,致胰岛素分泌降低,结果血糖上升,在超过肾糖阈时,即出现糖尿。注射胰岛素后可恢复。
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