1000ul加长盒装滤芯吸头102.1mm

分子生物学常用实验技术（page 2)

TE 缓冲液。 （三）同位素掺入放射性活性测定、计算和电泳分析 1. 试剂 　　1mg/ml 鲑鱼精DNA， 三氯乙酸(TCA, 5%和7%)，碱性琼脂糖胶，碱性胶电泳缓冲液，（ 30mMNaOH，1mM EDTA），2×样品缓冲液，（20mM NaOH，20% 甘油，0.025%溴酚蓝）。 2. 操作步骤 (1) 各取一2(5)中和二(4)反应液各3μl,点于玻璃纤维滤纸,室温干燥, 这些样品代表总放射性活性。 (2) 同样各取3μl 中反应液至含有100μl

一些分子生物学常用实验技术方法，建议加分啦

机, 分光光度计,微量移液枪。　　三. 试剂　　1.LB固体和液体培养基：配方见第一章。　　2.Amp母液：配方见第一章。　　3.含Amp的LB固体培养基:将配好的LB固体培养基高压灭菌后冷却至60℃左右,加入Amp储存液,使终浓度为50ug/ml,摇匀后铺板。　　4.麦康凯培养基(Maconkey Agar):取52g麦康凯琼脂,加蒸馏水1000ml,微火煮沸至完全溶解,高压灭菌，待冷至60℃左右加入Amp储存液使终浓度为50ug/ml,然后摇匀后涂板。　　5.0.05mol/L CaCl2溶液:称取

【资源】蛋白纯化经验指南（）

交换和亲和层析纯化， 现在我用聚乙二醇修饰它 ，分子量增加5000左右，修饰率不可能达到100％，请问修饰后能用什么纯化方法可以把修饰的和未经修饰的分开？（当然修饰后还残留有聚乙二醇，这个小分子也要除掉） 他们大多用凝胶过滤，我觉得这也不错的做法，毕竟PEG是链状的分子，在柱子上和普通蛋白行为不一样，修饰度越高那么出峰也越后，因此你的蛋白选择sephadex G50试试，它的范围在1000-30000，应该是不错的选择。此外PEG是个疏水性的链，修饰后的蛋白疏水性增强，修饰度越高，疏水性越强