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大鼠脑电记录系统,小鼠脑电记录系统

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  • 大鼠脑电记录系统,小鼠脑电记录系统
  • CHINA
  • 2026年01月21日
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    • 详细信息
    • 文献和实验
    • 技术资料
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      100

    • 国食药监械注册号

    • 保修期

      12个月

    • 现货状态

      大鼠血压遥测系统,小鼠血压遥测系统

    • 供应商

      玉研仪器公司

    • 规格

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    小动物脑电记录仪通过记录自由活动状态下大小鼠睡眠、癫痫和普通行为模式时的脑电肌电和加速度等信号,结合专业的睡眠或癫痫分析软件进行相关领域研究结果的输出。
     
    脑电肌电等生物电信号记录和分析是神经科学研究的必要手段。脑电肌电采集分析系统是用于大小鼠睡眠障碍、认知障碍、癫痫等领域不可或缺的仪器,可精确监测大小鼠脑电/肌电/加速度/同步视频信号并进行分析。通过监测动物EEG和EMG等数据,可深入进行睡眠模式、癫痫发作、学习记忆行为、麻醉激发抑制、神经震荡等研究及其在多种神经系统疾病中的作用,为相关疾病的治疗提供科学依据。

    脑电肌电采集分析系统具有实时、安全、高效、稳定、自动记录和分析等特点,极大降低了劳动强度和提高了准确性。系统通过特制的螺钉电极和脑电头帽,采集动物皮层/核团脑电以及颈部肌电,通过头戴式前置放大器及采集器逐级对信号放大和信号过滤,很大程度降低信号伪影,并获得干净的数据波形。系统支持自动分析并得出睡眠不同时相(WAKE-NREM-REM)和癫痫发作的各项统计数据。
     
    脑电记录系统的产品特点:
    · 分析金标准,头戴式放大器:通过有创方式记录EEG和EMG进行分析,国际认可度高;配备头戴式前置放大器,重量轻巧,不影响动物活动和监测。
    · 多通道采集,支持长期记录:支持多只动物同步进行记录,大大加快实验进程;动物活动笼配备水瓶和食槽,支持动物数月连续不间断记录。
    · 滤波功能强大,配备电磁屏蔽箱:具有高通/低通/50Hz数字滤波,可保证采集信号波形的干净稳定;电磁屏蔽箱可屏蔽环境噪声、电磁干扰,进行定时光照/黑暗控制。
    · 集成速度测量和同步视频采集:同步记录动物X/Y/Z加速度情况和动物活动视频,提高睡眠和癫痫分析的准确性。
     
     

    产品组成

    产品细节图片1

    ER-9000-M1型 单通道脑电采集、记录和分析系统

     

    产品细节图片2

    YAN-S3021型 电磁屏蔽箱

     

    产品细节图片3 

    ER-9000-M4型 多通道脑电采集系统

     

    技术原理

    动物手术:采集信号前将预制头帽通过螺钉电极固定于颅骨上,EEG信号通过螺钉电极跟皮层接触进行传导,EMG信号通过引线电极埋置于斜方肌下进行传导。
    信号采集:手术完成后,涂抹牙科水泥进行头帽固定和电极密封,将动物放置于活动笼中进行饲养,进行短期或长期的EEG和EMG信号同步采集。
    专业分析:根据需要,将采集的原始EEG和EMG信号文件导入至专业的睡眠分析软件、癫痫分析软件及Matlab进行分析。

     

    选型规格

    产品细节图片4

    ER-9000系列包含采集系统、同步视频模块和电脑工作站
    ER-8800系列仅包含采集系统、不包含同步视频模块和电脑工作站

     

    主要技术参数

    产品细节图片5

     

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    产品细节图片6

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    该产品被引用文献

    小动物脑电记录系统相关文献:
     

    Afzal, A., Kiyatkin, A.E. (2019) Interactions of benzodiazepines with her*oin: Respiratory depression, temperature effects, and behavior.Neuropharmacology. doi:10.1016/j.neuropharm.2019.107677
     

    Agnesi, F., Blaha, C.D., Lin, J., & Lee, K.H. (2010). Local glutamate release in the rat ventral lateral thalamus evoked by high-frequency stimulation.Journal of Neural Engineering, 7(2). doi: 10.1088/1741-2560/7/2/026009
     

    Agnesi, F., Tye, S.J., Bledsoe, J.M., Griessenauer, C.J., Kimble, C.J., Sieck, G.C., Bennet, K.E., Garris, P.A., Blaha, C.D., Lee, K.H. (2009). Wireless instantaneous neurotransmitter concentration system-based amperometric detection of dopamine, adenosine, and glutamate for intraoperative neurochemical monitoring. Journal of Neurosurgery, 111(4), 701-711. doi: 10.3171/2009.3.JNS0990
     

    Aizawa, H., Sun, W., Sugiyama, K., Itou, Y., Aida, T., Cui, W., Toyoda, S., Terai, H., Yanagisawa, M., Tanaka, K.. (2020) Glial glutamate transporter GLT-1 determines susceptibility to spreading depression in the mouse cerebral cortex. Glia. doi: 10.1002/glia.23874
     

    Aluisio, L., Fraser, I., Berdyyeva, T., Tryputsen, V., Shireman, B.T., Shoblock, J., Lovenberg, T., Dugovic, C., Bonaventure, P. (2014). Pharmacological or genetic orexin1 receptor inhibition attenuates MK-801 induced glutamate release in mouse cortex. Frontiers in Neuroscience, 8, 107. doi:10.3389/fnins.2014.00107
     

    Beamer, E, Engel T. (2019) Using Amperometric, Enzyme-Based Biosensors for Performing Longitudinal Measurements of Extracellular Adenosine 5-Triphosphate in the Mouse. Methods Mol Biol. 2041:197-207. doi: 10.1007/978-1-4939-9717-6_14

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