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文献和实验哺乳动物表达系统是适用于生成具有天然结构和活性的哺乳动物蛋白的首选表达平台，可以实现最高水平的翻译后加工，使蛋白质获得最佳功能活性，适合在最类似生理学的环境中研究特定蛋白质的功能。它常用于抗体和治疗性蛋白质以及人类功能细胞分析的蛋白质表达。 和稳定表达相比，哺乳动物瞬时表达系统可实现灵活且快速的蛋白质生产，可以在 1-2 周内生成大量蛋白质，适用于人或其他哺乳动物蛋白的表达，和大肠杆菌、酵母或昆虫细胞等宿主表达系统相比，可实现更天然的折叠和翻译后修饰——包括糖基化（图 1）。 图 1、哺乳动物蛋白表达
DNA模板上专一地与 RNA聚合酶结合并决定转录从何处起始的部位，也决定基因的转录效率。生物中有许多启动子，如大肠杆菌约有 2000个启动子。各启动子的效率可不相同，大肠杆菌的强启动子每 2秒钟启动一次转录，而弱启动子每 10分钟才启动一次，从百多个大肠杆菌启动子结构的分析，得知两个强启动子的同源序列的中心在转录起始部位（基因编码链上第一个核苷酸） 5'侧约 10和 35个核苷酸处，弱启动子序列中往往有多处核苷酸被置换。许多原核生物都含有这两个重要的启动
先前已经提到 Strep-tag® 的历史，现在我们将着重介绍 Strep-tag® 在哺乳类细胞表达系统的应用。虽然大肠杆菌 E.coli 表达系统经济实惠，但由于缺乏重要的脂类，分子螫合物，以及重要的翻译后修饰，用它表达真核蛋白，可能会影响蛋白本身的折叠及功能，以膜蛋白为例，大肠杆菌表达系统能影响目标蛋白在细胞膜的插入位置、及其应有的功能[1]。除此之外，当目标蛋白大于 50kDa 时，使用大肠杆菌系统可能表达出不完整的蛋白[2]。所以，为了研究特定蛋白的功能（如：信号通路）、生产较大
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