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北京百奥莱博科技有限公司
特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。
北京百奥莱博致力于最快速、最有效的检测产品,包括北京现货汉坦病毒荧光PCR检测试剂盒厂家直销在内的病毒PCR检测试剂盒产品是我公司倾力打造的优势产品,欢迎选购。
名称:北京现货汉坦病毒荧光PCR检测试剂盒厂家直销
编号:SYA244
等级:科研试剂
规格:48次/盒
品牌:百奥莱博
北京现货汉坦病毒荧光PCR检测试剂盒厂家直销极具性价比,此外,我公司正火爆促销以下产品:
·高致病性禽流感H5N2病毒双重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA154
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·大肠杆菌致贺毒素(Stx1)/(Stx2)双重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA107
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·猪链球菌/脑膜炎奈瑟菌双重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA113
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·蜱传出脑炎病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA240
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·牛病毒性腹泻(BVDV)单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA490
等级:科研实验专用
规格:48次/盒|96次/盒
·Nipah病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA237
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·东部马脑炎病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA234
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·甲型/乙型流感病毒双重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA165
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
一、简介:
本试剂盒用一对甲型(A型)流感病毒特异性引物,一对乙型(B型)流感病毒特异性引物,分别结合一条特异性荧光探针,用一步法双重荧光RT-PCR 技术对甲型流感病毒RNA、乙型流感病毒RNA进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。本试剂盒中甲型流感病毒的探针报告基团为FAM,乙型流感病毒的探针报告基团为HEX/VIC/JOE。
二、用途:
本试剂盒适用于各种咽拭子、鼻拭子、泄殖腔拭子、组织样品等临床样品中A型流感病毒和B型流感病毒的特异性检测。适用于A、B型流感病毒感染的辅助诊断、监测及流行病学调查,其检测结果仅供临床参考。
三、试剂盒组成:(48T)
组份 数量 规格
甲型乙型流感反应液(AB-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
qRT 酶混合物(qRT Enzymes MIX) 1管 48μL/管
无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
甲型乙型流感阳性对照(AB-PTC) 1管 50μL/管
四、储存条件及有效期:
本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6个月。
五、荧光PCR仪器适用范围:
ABI系列,Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。
六、样品的采集与RNA提取
6.1 样品的采集
按照相关标准采集。标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-80℃,但不能超过6个月,标本运送应采用0℃冰壶。
6.1.1 血清:用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL,注入无菌的干燥玻璃管,室温(22-25℃)放置30-60min,血标本可自发完成凝集析出血清,或直接使用水平离心机,3000rpm离心5min,吸取上层血清,转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.2 血浆:用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL,注入含EDTA2Na(乙二*(代"胺")四乙酸二*)或柠檬酸*抗凝剂的玻璃管,立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次,使抗凝剂与静脉血充分混匀,5-10min后即可分离出血浆,转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.3 拭子、分泌物等样品:在装有拭子或分泌物的离心管中加入500μL PBS或生理盐水,剧烈振荡30s。棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中,6000rpm离心20s,取上清备用。
6.1.4 病灶组织样品:称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(最好置于冰上或加入液氮),再加1mL生理盐水研磨至无块状物,然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液于1.5mL灭菌离心管中。
6.2 RNA提取
可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的RNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5μL 加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。
七、检测步骤:
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qRT-PCR 反应液(AB-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm 离心10s。
设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合物 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm 离心10s,向设定的N 个PCR 反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(AB-PTC)5μL,10000rpm 瞬时离心10 秒。
7.2 qRT-PCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 45 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM和HEX(若仪器无HEX通道,可选择VIC或JOE通道)。其中FAM基团检测A,HEX/VIC/JOE基团检测B。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX 参比荧光。
八、结果分析:
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
(1) 阴性对照(NTC):FAM和HEX/VIC/JOE通道全部阴性。
(2) 阳性对照(AB-PTC):FAM和HEX/VIC/JOE通道的Ct值<30。
以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效
8.3 结果判定
(1) FAM通道:Ct值≤35 IAV-A核酸为阳性;Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明IAV-A核酸阴性。
Ct值在35-40个循环之间,为灰区,需要进行重复试验。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明IAV-A核酸阳性;否则判为样本阴性。
(2) HEX/VIC/JOE通道:Ct值≤35 IAV-B核酸为阳性;Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明IAV-B核酸阴性。Ct值在35-40个循环之间,为灰区,需要进行重复试验。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明IAV-B核酸阳性;否则判为样本阴性。
九、注意事项:
(1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2) 所有使用的离心管最好高压灭菌,而且必须不含RNA 酶。
(3) PCR 操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR 扩增区等),防止实验室污染。
(4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
(5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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·牛口蹄疫O型抗体ELISA检测试剂盒
编号:SYA660
等级:科研实验专用
规格:192次/盒|480次/盒
·转基因植物35S启动子单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA265
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·常见大肠埃希氏菌多重凝胶PCR检测试剂盒(EPEC, EHEC, ETEC, EIEC, EAEC五种致泻性大肠埃希氏菌多重凝胶PCR检测试剂盒)
编号:SYA254
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
本试剂盒可用于肠致病性(EPEC)、肠出血性(EHEC)、肠产毒性(ETEC)、肠侵袭性(EIEC)、肠粘附性(EAEC)、大肠埃希氏菌的毒力基因谱及其致病型别的检测。实验结果仅为基础研究提供参考,不作为临床诊断依据。
本试剂盒采用多重PCR技术,适用于五种致泻性大肠埃希氏菌(EPEC、EHEC、ETEC、EIEC、EAEC)的检测。试剂盒的每个反应体系均含有大肠埃希氏菌种属和毒力基因检测的十二对特异性引物,根据PCR扩增产物的条带大小来判断菌株中含有的毒力基因种类并确定其致病型别。
试剂盒组成:
英文名称 | 中文名称 | 规格 | 数量 |
PCR Mix | PCR反应液 | 195μL/管 | 5 |
Taq Ploymerase | Taq酶 | 10μL/管 | 3 |
DNA Extraction | 核酸提取试剂 | 1.5mL/管 | 2 |
Negative Control | 阴性对照 | 50μL/管 | 1 |
Positive Control | Ec阳性对照 | 50μL/管 | 1 |
试剂 | 每个反应体系的量 | N个反应加入的量 |
Ec PCR反应液 | 19.5μL | N×19.5µL |
Taq酶 | 0.5 μL | N×0.5µL |
总量 | 20µL | N×20µL |
程序 | 循环数 | 温度 | 反应时间 |
1 | 1 | 95 | 4min |
2 | 35 | 95 | 40s |
62 | 1min 10s | ||
72 | 1min 40s | ||
3 | 1 | 72 | 5min |
致病型 | 毒力基因种类 及片段大小 |
阳性判定结果组合 | |
EPEC | bfpB(900bp) escV(540bp) |
uidA(1500bp)+ | 典型:bfpB(+),escV(+),stx1(-),stx2(-) 不典型:bfpB(-),escV(+),stx1(-),stx2(-) |
EHEC | escV(540bp) stx1(240bp) stx2(320bp) |
uidA(1500bp)+ | escV(+/-),stx1 (+),stx2 (-),bfpB (-) escV(+/-),stx1 (-),stx2 (+),bfpB (-) escV(+/-),stx1 (+),stx2 (+),bfpB (-) |
ETEC | elt(650bp) estla(160bp) estlb(170bp) |
uidA(1500bp)+ | elt(+),estla(-),estlb(-) elt(+),estla(+),estlb(-) elt(+),estla(-),estlb(+) elt(-),estla(-),estlb(+) |
EIEC | invE(760bp) | uidA(1500bp)+ | invE(+) |
EAEC | astA(100bp) aggR(400bp) pic(1100pb) |
uidA(1500bp)+ | astA, aggR, pic中一条或一条以上阳性 |
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