- ￥1280 - 3860
- LMAI Bio
- 1.563-100ng/mL
- 中国/美国/德国/日本
- LM-OGDH-Hu
- 2025年07月15日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
大量
- 供应商：
联迈生物
- 检测范围：
1.563-100ng/mL
- 检测方法：
酶联免疫ELISA法
- 应用：
科研实验
- 适应物种：
Homo sapiens human
- 样本：
血清、血浆及相关液体
- 规格：
48T/96T
1. 本试剂盒用于科学研究，非诊断试剂，不能用于临床诊断。
2. 请在本试剂盒标记的有效期内使用。
3. 试剂盒的试剂不能与其他批号的试剂或其他来源的试剂混合使用。
4. 如果样本值高于标准曲线最高浓度，请用检测缓冲液稀释样本，并重新检测。如果细胞培养上清样本需要较大的稀释倍数，请用细胞培养基进行适度稀释。
5. 任何标准品稀释、操作人员、移液技术、洗涤技术、孵育温度、保存时间的改变，都将影响结合反应。
6. 本试剂盒在设计上去除或降低了生物学样本中的一些内源性干扰因素，并非所有可能的影响因素都已去除。
试剂盒提供的材料： 详见说明书（可咨询索要）
【酶标板准备】
1. 包被：根据资料将捕获抗体包被至最终浓度，每孔中加入100μl的包被溶液，立即用封板膜封上酶标板，置于2-8℃过夜，让其发生结合过程。倒出孔中溶液，用 300 μl 的洗液洗涤一次，洗涤过程根据下面的洗涤步骤进行。
2. 封闭：每孔加入250μl检测缓冲液，室温孵育2小时，或者2 - 8℃封闭过夜。封闭后的酶标板可置于2-8℃贮存1个星期，或者-20℃贮存2个月。封闭后的酶标板若要立即使用，请先洗涤两次，然后加入样本。
【洗板步骤】 撕掉封板膜、弃掉孔中液体，每孔加入约300μl的洗液，洗涤6次。每次洗完都要彻底移除孔中溶液。条件允许的话，加入洗液后最好300转/分钟振荡60秒，注意请勿接触酶标板的表面。每次洗涤，在吸水纸上拍干多余的洗液，洗板完成后请立即使用酶标板，或者颠倒置于湿的吸水纸上不得超过 15 分钟，不要让酶标板干燥。
【显色底物】
每孔加入100μl的显色底物。
【终止液】
每孔快速加入100μl终止液终止酶活反应。为了完全抑制酶活，终止液要均匀地覆盖微孔。加入终止液后，须立即读数，或者置于黑暗中2-8℃1个小时。测定450nm最大吸收波长和570nm 或630nm参考波长下样本和标准品的OD值。
细胞培养上清
300 g 离心 10 分钟去除沉淀物，即刻检测, 或者分装，-20℃以下贮存。
血清样本
分离管分离血清。在 1000 g 离心之前，使血样凝集 30 分钟。吸取血清样本之后即刻检测，或者分装，-20℃以下贮存
血浆样本
EDTA或肝素抗凝收集血浆样本。1000 g 离心 30 分钟收集样本。即刻检测，或分装，-20℃以下贮存。
辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素稀释前充分混匀。
根据标准品和待测样本的数量，用 1×检测缓冲液按 1：100 稀释浓缩的辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素。
血清/血浆样本标准曲线的制作：
取 150 μl 浓缩的标准品，加入 150 μl 标准品稀释液，作为标准曲线的最高浓度 (1000pg/ml)。在每一个试管中加入 150 μl 标准品稀释液。使用高浓度标准品做 1：1 系列稀释。每次移液时，请确保充分混匀。以标准品稀释液作为标准曲线的零浓度。
细胞培养上清样本标准曲线的制作：
取 150 μl 浓缩的标准品，加入 150 μl 细胞培养基，作为标准曲线的最高浓度 (1000pg/ml)。在每一个试管中加入 150 μl 细胞培养基。使用高浓度标准品做 1：1 系列稀释。每次移液时，确保充分混匀。以细胞培养基作为标准曲线的零浓度。
检测步骤:检测之前请将所有的试剂、样本平衡至室温。
结果计算
计算标准品和样本的平均 OD 值，然后减去零浓度标准品的 OD 值。
以标准品浓度为横坐标，OD 值为纵坐标，用计算机软件进行回归拟合生成标准曲线。回归分析确定最佳拟合曲线。通过对浓度值和 OD 值取对数拟合，可以对标准曲线进行线性化。此过程可能可以得到更多样本的浓度，但数据的准确度会降低一些。
灵敏度
10个零标准品浓度 OD 的平均值加上两倍 SD，计算最低可检测浓度。
酶标板内精密度
3 个已知浓度的样本酶标板内重复测定 20 次，评估酶标板内的精密度。
酶标板间精密度
3 个已知浓度的样本酶标板间重复检测 6 次，评估酶标板间的精密度。
| 酶标板内精密度 | 酶标板间精密度 | |||||
| 样本 | 1 | 2 | 3 | 1 | 2 | 3 |
| 20 | 20 | 20 | 6 | 6 | 6 | |
| 平均值 (pg/ml) | 60.1 | 155.0 | 402.8 | 64.2 | 161.7 | 410.4 |
| 标准差 | 2.7 | 3.8 | 11.0 | 4.4 | 9.9 | 16.2 |
| 变异系数 (%) | 4.4 | 2.5 | 2.7 | 6.8 | 6.1 | 3.9 |
5 份健康血清加入 3 个不同浓度水平的试剂盒，未加的血清作为本底，计算回收率。回收率的范围从 81 %至 106 %，平均回收率为 93 %。
稀释线性
5 份健康血清加入高浓度的试剂盒，并在标准曲线的动力学范围内进行系列稀释，评估检测的线性。
| 平均值 (%) | 范围 (%) | |
| 1:2 | 102 | 99-110 |
| 1:4 | 97 | 95-102 |
| 1:8 | 94 | 88-99 |
| 1:16 | 95 | 85-102 |
应用本试剂盒，检测 30 份健康志愿者的血清样本，志愿者的用药史不详。
| 样本 类型 |
检测样本 数量 |
浓度范围 (pg/ml) |
可测百分率 (%) |
可测样本平均浓度 (pg/ml) |
| 血清 | 30 | n.d. | 0 | n.d. |
注意: 此样本值范围非生理值范围。健康人样本的浓度范围因地域、种族、样本制备以及检
测人员、设备的不同而有所不同。以上数据仅供参考。
特异性
本试剂盒识别天然和重组。下述因子以 1 ng/ml 稀释于标准品稀释液中，评估交叉反应活性。下述因子以 1 ng/ml 稀释于中等浓度的标准品中，评估干扰影响。没有观察到明显的交叉反应和干扰影响。
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文献和实验快速解酒，还可减轻酒精伤害！中国团队开发的重组益生菌，或成为新型「解酒神器」
Alcohol Consumption in Mice 的研究。研究团队设计出了一种表达 hADH1B 的重组益生菌，该益生菌可帮助小鼠减少酒精吸收，延长酒精耐受时间及缩短急性饮酒后的恢复时间。更重要的是，该益生菌还可保护肝脏和肠道免受酒精刺激引起的急性损伤。 图 1 文献截图（来源：[2]） 喝酒之后，酒精（乙醇）会被胃肠道吸收而进入血液，然后通过血液循环到达肝脏，在肝脏中，乙醇脱氢酶（ADH）负责将乙醇（酒精）催化为乙醛，然后在肝脏中的醛脱氢酶（ALDH）催化的反应中迅速转化为二氧化碳和水。人们喝酒
将活的细胞与有机残体(如已经死亡的微生物残体) 区分开，用它来作为衡量生物量的指标并不准确。为此，人们开始尝试用脱氢酶活性(DHA)、比耗氧速率(SOUR) 和三磷酸腺苷(ATP) 等生物指标来反映微生物活性。而在这些指标中，ATP广泛存在于生物细胞内，是生物体内能量代谢的重要产物和细胞代谢可利用能量的携带者，并参与生物体内蛋白质、脂肪的生化合成、吸收等反应。所以，通过测定ATP含量的多少，可以直接反映细胞活性、微生物的数量，而且它的测定方法简单快速。将ATP应用于污泥生物活性的检测，已经引起广泛
原夹心法测抗体，偶联酶标记法测抗原，桥联酶免疫分析，酶放大免疫分析技术等，后者应用了生物素-亲和素系统，底物循环放大系统，酶-抗酶放大系统及酶偶联放大系统等。（2）由于酶标记技术的进步，标记酶的应用已从过氧化物酶，扩展到碱性磷酸酶，β半乳糖苷酶，尿素酶，葡萄糖6磷酸脱氢酶，葡萄糖氧化酶，苹果酸脱氢酶，至今有二十多种酶被应用于EIA ，但应用最多的仍然是辣根过氧化物酶（Horseradish Peroxidase,HRP）和碱性磷酸酶（Alkalinephasphotase，ALP）。（3） 酶
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