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- CM-H025
- 2025年12月06日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
大量库存
- 细胞类型：
正常细胞/癌细胞
- 组织来源：
详询客服人员
- 相关疾病：
详询
- 物种来源：
人源
- 器官来源：
详询客服人员
- 运输方式：
常温/干冰
- 年限：
永久
- 生长状态：
优良
细胞名称：UM-UC-3 人膀胱移行细胞癌
培养条件：MEM +10% FBS
形 态：贴壁；上皮细胞样
1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好，培养液是否有漏液、浑浊等现象，若有上述现象发生请及时和我们联系。
2. 仔细阅读细胞说明书，了解细胞相关信息，如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。
3. 用75%酒精擦拭细胞瓶表面，显微镜下观察细胞状态。因运输问题贴壁细胞会有少量从瓶壁脱落，将细胞置于培养箱内静置培养过夜，隔天再取出观察。此时多数细胞均会贴壁，若细胞仍不能贴壁请用台盼蓝染色测定细胞活力，如果证实细胞活力正常，请将细胞离心后用新鲜培养基再次贴壁培养；如果染色结果显示细胞无活力，请拍下照片及时和我们联系，信息确认后我们为您再免费寄送一次。
4. 建议客户收到细胞后前3天各拍几张细胞照片，记录细胞状态，便于和技术部沟通交流。
贴壁细胞常规培养传代流程（请严格遵照无菌操作）
1. 弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
2. 加2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培养瓶中，置于37℃培养箱中消化1-2分钟，然后在显微镜下观察细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，迅速拿回操作台，轻敲几下培养瓶后加5-6ml完全培养基终止消化。
3. 按6-8ml/瓶补加培养基，轻轻打匀后吸出，在1000RPM条件下离心5分钟，弃去上清液，补加1-2mL培养液后吹匀。
4. 将细胞悬液按1：2到1：5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。
悬浮细胞常规培养传代流程（请严格遵照无菌操作）
方法一：收集细胞，1000RPM条件下离心5分钟，弃去上清液，补加1-2mL培养液后吹匀，将细胞悬液按1：2到1：5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。
方法二：可选择半数换液方式，弃去半数细胞培养基后，将剩余细胞悬起，将细胞悬液按1：2到1：3的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。
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文献和实验【求助】文献上细胞给药剂量用10um是10um/ml还是10um/L啊？
haohuaiyong 大家好啊，我现在想用AG490处理细胞，干扰JAK-STAT3信号通路，查了相关文献，有的给药10Um,但是不知道（呵呵，我比较菜），是10um/ml还是10um/L，还请战友帮忙解答一下。 付文献截图 xdb86 人家的m是大写的M，M就是mol/L，10uM就是10×10-6mol/L。uM已经是一个浓度单位了，所以没有你说的：是10um/ml还是10um/L。
文献中常用的分离外泌体的方法主要是超离法和试剂盒法，那这两种方法研究人员该如何选择呢？为了解决大家的疑惑，我们专门做了对比实验进行阐述。 四、超速离心法与试剂盒法比较 （一）实验分组和开展实验确定： 此实验共分为 3 组，每组设置 2 个重复，所选原始样本是 293T 细胞培养上清。 组1：超离法分离（UC-1，UC-2）； 组2：使用某国外试剂盒 SXX（SXX-1，SXX-2）； 组3：使用某国内试剂盒 UXX（UXX-1，UXX-2）。 开展
超微量外泌体蛋白质组突破用量极限和检测上限-低至200μL血浆！高达4000+ EV蛋白！
PART.1 外泌体蛋白质功能 外泌体是由各种活细胞释放的脂质双层膜包裹的小细胞外囊泡(small extracellular vesicle, sEV)，外泌体蛋白质被包裹在膜内或包埋在表面。外泌体蛋白作为一种重要的外泌体货物，可以反映母体细胞的生理状态，在细胞间通讯中发挥重要作用。外泌体蛋白可以调节肿瘤发展，包括肿瘤相关免疫调节、微环境重建、血管生成、上皮间充质转换EMT、转移等。外泌体蛋白质的特征可以深入了解外泌体的产生、靶向和生物学功能，是疾病诊断、预后和治
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