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大鼠虹膜色素上皮细胞

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  • ¥4900 - 6800
  • Sciencell
  • 中国/美国
  • SC-R118
  • 2025年07月06日
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      5×10⁵cells/T25

    • 供应商

      沪震实业

    • 肿瘤类型

    • 细胞类型

      原代细胞

    • 品系

      原代细胞

    • 组织来源

      眼球

    • 相关疾病

    • 物种来源

      大鼠

    • 免疫类型

    • 细胞形态

      电询

    • 是否是肿瘤细胞

      不是

    • 器官来源

      大鼠

    • 运输方式

      干冰

    • 年限

      5-10年

    • 生长状态

      良好

    • 规格

      5×10⁵cells/T25

    原代细胞 细胞株
    生长较快(5-7天铺满单层) 较快
    有限 较多
    饱满且旋涡状排列 单薄且多颗粒物质
    阳性反应强 阳性反应弱
    细胞生长稳定良好 易发生形态生理变化
     
    大鼠虹膜色素上皮细胞
    1.产品名称:大鼠虹膜色素上皮细胞
    2.组织来源:眼球组织
    3.产品规格:5×10^5cells/T25细胞培养瓶
    大鼠虹膜色素上皮细胞4.细胞简介:
    大鼠虹膜色素上皮细胞分离自眼球虹膜组织;虹膜是眼睛构造的一部分,属于眼球中层,位于血管膜的最前部;在睫状体前方虹膜,中心有一圆形开口,称为瞳孔,犹如相机当中可调整大小的光圈,内含色素决定眼睛的颜色。日间光线较为强烈时,虹膜会收蹜,只使一小束光线穿透瞳孔,进入眼睛;当进入黑暗环境中,虹膜就会往后退缩,使瞳孔变大,让更多的光线进入眼睛,多数的脊椎动物的眼睛都有虹膜。虹膜色素上皮细胞(IPE)是虹膜重要结构组成细胞之一,位于虹膜组织的后面,和视网膜色素上皮细胞(RPE)同样起源于神经外胚叶层,可能具有相似的生物学功能,因此对IPE的研究将为防治因RPE结构或功能异常而导致的眼底病提供新思路。
    本公司生产的大鼠虹膜色素上皮细胞采用胰蛋白酶-胶原酶混合消化法结合差速贴壁法,并通过上皮细胞专用培养基培养筛选制备而来,细胞总量约为5×10^5cells/瓶;细胞经Cytokeratin-18/PCK免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
    大鼠虹膜色素上皮细胞5.培养基信息:
    M199、FBS、上皮细胞生长添加剂、Hydrocortisone、Insulin、Transferrin、Epinephrine、Penicillin、Streptomycin等
    我们推荐使用HZbscience大鼠虹膜色素上皮细胞专用完全培养基作为体外培养大鼠虹膜色素上皮细胞的培养基。
    二、细胞培养状态
    发货时发送细胞电子版照片
    三、使用方法
    在HZbscience技术部标准操作流程下,人肾动脉内皮细胞可传3-5代;建议您收到细胞后尽快进行相关实验。
    客户收到细胞后,请按照以下方法进行操作。
    1. 取出T25细胞培养瓶,用75%酒精消毒瓶身,拆下封口膜,放入37℃、5%CO2、饱和湿度的细胞培养箱中静置3-4h,以稳定细胞状态。
    2. 待细胞达到80%汇合时准备进行传代培养。
    3. 细胞传代
    1) 吸出T25细胞培养瓶中的培养基,用PBS清洗细胞一次;
    2) 添加0.25%胰蛋白酶消化液1mL至培养瓶中,轻微转动培养瓶至消化液覆盖整个培养瓶底后,吸出多余胰蛋白酶消化液,37℃温浴1-3min;倒置显微镜下观察,待细胞回缩变圆后,再加入5ml完全培养基终止消化;
    3) 用吸管轻轻吹打混匀,按1:2-1:3适当的比例进行接种传代,然后补充新鲜的完全培养基至5mL,置于37℃、5%CO2、饱和湿度的细胞培养箱中静置培养;
    4) 待细胞完全贴壁后,培养观察;之后每隔2-3天更换新鲜的完全培养基。
    四、注意事项
    1. 培养基于4℃条件下可保存3-6个月。
    2. 在细胞培养过程中,请注意保持无菌操作。
    3. 传代培养过程中,胰酶消化时间不宜过长,否则会影响细胞贴壁及其生长状态。
    4. 建议客户收到细胞后前3天每个倍数各拍几张细胞照片,记录细胞状态,便于和HZbscience技术部沟通;由于运输的原因,个别敏感细胞会出现不稳定的情况,请及时和我们联系,详尽告知细胞的具体情况,以便我们的技术人员跟踪、回访直至问题得到解决。
    5. 该细胞只可用于科研。
    备注:由于实验所用试剂、操作环境及操作手法的不同,以上方法仅供各实验室参考
     

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    • 作者
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    图标文献和实验
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    • 正常大鼠唾液腺上皮细胞的培养

      实验材料: 1. 新生大鼠唾液腺; 2. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素,pH7.2; 3. 培养用液:DMEM培养液,添加10%的胎牛血清、5μg/ml胰岛素、10 ng/ml表皮生长因子、50 ng/ml氢化可的松、100 IU/ml青霉素和100μg/ml链霉素。无Ca2+ 、Mg2+ 的D-Hanks液,使用时添加100 IU/ml青霉素和100μg/ml链霉素; 4. 鼠尾胶原液:先吸取4ml

    • 大鼠原代肾小管上皮细胞培养方法

      本人把大鼠原代肾小管上皮细胞的取材、培养方法进行了总 结,请分享! 取材:1.肾小管节段的分离(机械网筛滤过法): ①取 Wistar 大鼠断颈法处死,立即置入碘伏液中浸泡 5 分钟。 ②将大鼠转移入超净工作台,取腰部切口迅速取出肾脏,置于盛有生理盐水的培养皿中清洗并除去包膜和肾蒂组织。 ③取皮质置于80目筛网上,剪碎成1-2mm3大小组织块,网下放盛有少量生理盐水的培养皿。 ④用玻璃注射器内芯于80目网上充分研磨组织。 ⑤收集 80 目网下液体转移至 100

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