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- yjto0438
- 2025年07月14日
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- 技术资料
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室温,避光,12个月
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大量供应
- 供应商：
上海研谨生物
- 规格：
100ml
苏木素染色中biotopped推荐采用该试剂。无氧化膜,细胞核染色质着色深而细微,临床上常替代Harris苏木素染色液,染色时间一般3-5分钟。常规组织切片HE染色
⑧□自来水冲洗 1～5s
2、自来水冲洗
5～10s
2～5s
5、(可选)盐酸乙醇分化
6、自来水冲洗
7、(可选)蓝化液返蓝
8、自来水冲洗
9、伊红染色液染色
10、自来水冲洗
11、80%的乙醇
12 、95%的乙醇
13、无水乙醇
14、苯酚二甲苯(1:3)
15、二甲苯透明 3 次，每次 2～5s。
16、中性树脂封片
染色结果：细胞核呈蓝色；细胞质、纤维呈红色。
2、自来水冲洗 2 次，每次 2min。
3、蒸馏水冲洗 2 次，每次 2min。
2～5s
2～5s
2～5s
5～10s
2～5s
1～2s
1～2s
1～2s
2～5s
2～5s
改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液
产品简介：
苏木素(Hematoxylin)和伊红(Eosin)联合染色简称 HE 染色，是病理学和组织学最常用的一种染色方法。苏木*精为碱性天然染料，可使细胞核着色。细胞核内染色质的主要成分是DNA，在DNA 的双螺旋结构中，两条核苷酸链上的磷酸基向外，使DNA双螺旋的外侧带负电荷，呈酸性，很容易不带正电荷的苏木**精碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。
改良Lillie-Mayer 苏木素染色液无毒，无氧化膜，细胞核染色质着色深而细微，临床上常替代Harris 苏木素染色液。对细胞核染色很清晰，不着染胞质和纤维成分，属进行性
染色，故染色后可以不用盐酸乙醇分化，染色时间约 5～8min，如果是充分氧化后可染色 3～5min。常用于糖原等特染、酶组化和免疫组化等染色后复染细胞核作对照染色，尤其适用 于经过特殊染色后不能经酸处理时对细胞核的复染。在特殊染色中，常不天青石蓝B液联合染色，使细胞核染色后不被后续的酸性染料所褪色。
双螺旋结构中，两条核苷酸链上的磷酸基向外，使DNA 双螺旋的外侧带负电荷，呈酸性，很容易不带正电荷的苏木素碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。苏木素在碱性溶液中呈蓝色，所以细胞核被染成蓝色。
电荷的阳离子结合，使细胞浆着色，呈现红色。
红染色，才能保证细胞核不细胞浆染色的分明。
4、返蓝作用：
分化之后，苏木素在酸性条件下处于红色离子状态，呈红色；在碱性条件下处于蓝色
离子状态，呈蓝色。组织切片经酸性乙醇分化后呈红色或粉红色，立即用水除去组织切 片上的酸而中止分化，再用弱碱性水使苏木素染上的细胞核呈现蓝色，这个过程称为返蓝作用或蓝化作用。另外用自来水浸洗也可使细胞核返蓝，但所需时间较长。
2、蓝化液，如稀氨*水、碳酸锂溶液等
3、系列乙醇
4、伊红染色液
5、4%多聚甲*醛
操作步骤(仅供参考)：
①□二甲苯作用 2 次，每次 5～10min。
②□(可选)无水乙醇作用 2 次，每次 3～5min。
③□95%的乙醇 3～5min
④□90%的乙醇 3～5min
产品简介：
苏木素(Hematoxylin)和伊红(Eosin)联合染色简称 HE 染色，是病理学和组织学最常用的一种染色方法。苏木*精为碱性天然染料，可使细胞核着色。细胞核内染色质的主要成分是DNA，在DNA 的双螺旋结构中，两条核苷酸链上的磷酸基向外，使DNA双螺旋的外侧带负电荷，呈酸性，很容易不带正电荷的苏木**精碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。
改良Lillie-Mayer 苏木素染色液无毒，无氧化膜，细胞核染色质着色深而细微，临床上常替代Harris 苏木素染色液。对细胞核染色很清晰，不着染胞质和纤维成分，属进行性
染色，故染色后可以不用盐酸乙醇分化，染色时间约 5～8min，如果是充分氧化后可染色 3～5min。常用于糖原等特染、酶组化和免疫组化等染色后复染细胞核作对照染色，尤其适用 于经过特殊染色后不能经酸处理时对细胞核的复染。在特殊染色中，常不天青石蓝B液联合染色，使细胞核染色后不被后续的酸性染料所褪色。
染色原理：
1、细胞核染色的原理：
苏木素为碱性天然染料，可使细胞核着色。细胞核内染色质的成分主要是DNA，在DNA双螺旋结构中，两条核苷酸链上的磷酸基向外，使DNA 双螺旋的外侧带负电荷，呈酸性，很容易不带正电荷的苏木素碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。苏木素在碱性溶液中呈蓝色，所以细胞核被染成蓝色。
2、细胞浆染色的原理：
伊红是一种化学合成的酸性染料，在一定条件下可使细胞浆着色。细胞浆的主要成分是蛋白质，为两性化合物，细胞浆的染色不染液的 pH 值密切相关。当染色液 pH 值在胞浆蛋白质等电点(4.7～5.0)以下时，胞浆蛋白质以碱式电离，则细胞浆带正电荷，就可 被带负电荷的酸性染料染色。伊红在水中离解成带负电荷的阴离子，不胞浆蛋白质带正电荷的阳离子结合，使细胞浆着色，呈现红色。
3、分化作用：
染色后，用某些特定的溶液将组织过多结合的染色剂脱去，这个过程称为分化作用，所 用的溶液称为分化液。在HE 染色中常用1%盐酸乙醇作为分化液，因酸能破坏苏木素的醌型结构，使组织不色素分离而退色。大多数组织经苏木素染色后，必须用 1%盐酸乙醇分化，使细胞核过多结合的苏木素染料和细胞浆吸附的苏木素染料脱去，再进行伊红染色，才能保证细胞核不细胞浆染色的分明。
4、返蓝作用：
分化之后，苏木素在酸性条件下处于红色离子状态，呈红色；在碱性条件下处于蓝色
离子状态，呈蓝色。组织切片经酸性乙醇分化后呈红色或粉红色，立即用水除去组织切 片上的酸而中止分化，再用弱碱性水使苏木素染上的细胞核呈现蓝色，这个过程称为返蓝作用或蓝化作用。另外用自来水浸洗也可使细胞核返蓝，但所需时间较长。
产品组成：改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液 100ml 500ml RT 避 光
自备材料：
1、酸性乙醇分化液2、蓝化液，如稀氨*水、碳酸锂溶液等
3、系列乙醇
4、伊红染色液
5、4%多聚甲*醛
操作步骤(仅供参考)：
(一)石蜡切片染色
1、切片脱蜡至水①□二甲苯作用 2 次，每次 5～10min。
②□(可选)无水乙醇作用 2 次，每次 3～5min。
③□95%的乙醇 3～5min
④□90%的乙醇 3～5min
⑤□80%的乙醇
⑥□自来水或蒸馏水冲洗
②□自来水或蒸馏水冲洗
③□(可选)盐酸乙醇分化
④□自来水冲洗
⑤□(可选)蓝化液返蓝
⑥□自来水冲洗
⑦□伊红染色液染色
3～5min
1～3min
5～8min 5～10s
2～5s
20～30s
20～40s
30～60s 3～5min
⑥□自来水或蒸馏水冲洗
2、染色
①□改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液染色②□自来水或蒸馏水冲洗
③□(可选)盐酸乙醇分化
④□自来水冲洗
⑤□(可选)蓝化液返蓝
⑥□自来水冲洗
⑦□伊红染色液染色
3～5min
1～3min
5～8min 5～10s
2～5s
20～30s
20～40s
30～60s 3～5min
⑧□自来水冲洗 1～5s
2、脱水、透明、封固
①□80%乙醇 10～20s ②□90%乙醇
③□95%乙醇作用 2 次，每次 1～2min。
④□无水乙醇作用 2 次，每次 2～3min。
⑤□二甲苯透明 3 次，每次 2～3min。
⑥□中性树脂封片。
10～20s
③□95%乙醇作用 2 次，每次 1～2min。
④□无水乙醇作用 2 次，每次 2～3min。
⑤□二甲苯透明 3 次，每次 2～3min。
⑥□中性树脂封片。
10～20s
染色结果：细胞核呈蓝色；细胞质、肌纤维、胶原纤维等呈深浅不一的红色；角蛋白、红细
胞等呈明亮的橙红色。
胞等呈明亮的橙红色。
(二)冰冻切片染色
1、乙谜醚-乙醇混合固定液2、自来水冲洗
5～10s
2～5s
3、改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液滴染 1～2min(可加热至 50℃)。4、自来水冲洗 2～5s
5、(可选)盐酸乙醇分化
6、自来水冲洗
7、(可选)蓝化液返蓝
8、自来水冲洗
9、伊红染色液染色
10、自来水冲洗
11、80%的乙醇
12 、95%的乙醇
13、无水乙醇
14、苯酚二甲苯(1:3)
15、二甲苯透明 3 次，每次 2～5s。
16、中性树脂封片
染色结果：细胞核呈蓝色；细胞质、纤维呈红色。
(三)细胞染色
1、4%多聚*甲*醛固定 10～20min。2、自来水冲洗 2 次，每次 2min。
3、蒸馏水冲洗 2 次，每次 2min。
2～5s
2～5s
2～5s
5～10s
2～5s
1～2s
1～2s
1～2s
2～5s
2～5s
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改良Lillie-Mayer苏木素染色液
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