蛋白标准品，重组WesternC试剂盒，试用装

如何选择合适的蛋白含量测定方法？

测定是一种简单、精确的蛋白浓度定量方法。现成的1倍浓度染料和7 个预稀释浓度(0.125、0.25、0.5、 0.75、1.0、1.5、2.0 mg/ml)的蛋白标准品，让你拥有现成的检测工具。无需稀释标准品和染料，一步完成蛋白浓度定量。 Bio–Rad 蛋白测定 也是一种简单的蛋白浓度测定方法。该方法适应标准浓度测定、低浓度微量测定，或96孔微孔板的快速测定。它的基本原理和流程和上面的Quick Start Bradford都是一样的，不过要麻烦一点点。因为除了要稀释蛋白标准品，配成几个

蛋白定量Commassie法和BCA法比较

ug/ml,250 ug/ml,125 ug/ml,62.5 ug/ml,31.25 ug/ml,15.625 ug/ml八个浓度的蛋白标准溶液。 2.M231用细胞总蛋白提取试剂提取总蛋白。 3.各取20ul蛋白标准品和待测M231样品至相应标记的微孔板中。 4.滴加200ul考马斯增强型试剂（溶液A）至每孔混匀并充分震荡30S 5.停止震荡，在室温孵育样品10min 6.在酶标仪中测量595nm时的吸光值。 7.绘制标准曲线，再用标准曲线判断出

表达蛋白的SDS

-PAGE分析，同时将SDS低分子 量蛋白标准品作平行处理。 （三）上样: 取10μl诱导与未诱导的处理后的样品加入样品池中,并加入20μl低分子 量蛋白标准品作对照。 （三） 电泳:在电泳槽中加入1´电泳缓冲液，连接电源，负极在上，正极在下，电泳时，积层胶电压60V,分离胶电压100V,电泳至溴酚兰行至电泳槽下端停止（约需3hr）。 （四） 染色:将胶从玻璃板中取出，考马斯亮兰染色液染色，室温4-6hr。 （五） 脱色:将胶从染色液中取出,放入脱色液中,多次脱色至蛋白带清晰。 （六