狗脏器组织白细胞分离液供应

生物样品的采集及实验动物的解剖和脏器系数测定标准操作规程(SOP)

量的空气，使动物发生空气栓塞，形成严重的血液循环障碍而死亡。一般家兔注入20~40ml空气，狗注入80~150ml空气即可致死。本法优点是处死方法简单、迅速，缺点是由于动物死于急性循环，各脏器淤血十分明显。 ② 急性失血法；先使动物麻醉，暴露股三角区或腹腔，再切断股动脉或腹主动脉，立即喷出血液。用一块湿纱布不断擦去切口周围处的血液和血凝块，同时不断地用自来水冲洗流血，使切口处保持通畅，动物在3~5分钟内即可死亡。采用本法动物十分安静，对脏器无损害，但器官贫血比较明显，是目前活杀采集病理标本较好

生物样品的采集及实验动物的解剖和脏器系数测定

的研究。组织匀浆的制备以及在匀浆技术的基础上发展起来的亚细胞结构分离技术，也是药物毒理实验的重要技术之一。 二、目的 学习和掌握药物毒理学试验中常用的生物材料的采集方法；实验动物的处死方法、大体解剖检查、脏器系数和含水量的测定以及组织匀浆的制备；了解病理切片常规收集样本的部位和方法。 三、内容 （一）小鼠、大鼠、家兔与狗常用的采血方法。 （二）小鼠、大鼠与家兔尿液的收集方法。 （三）精液、唾液与胃液的收集方法。 （四）小鼠、大鼠与家兔常用的处死方法。 （五）实验动物的大体

细胞培养基本技术（免疫细胞分离、肿瘤细胞株传代培养）

（张卓然、孟庆丽、陈琰、陈彦伟） 一、免疫细胞分离技术 1、淋巴细胞的分离 取肝素抗凝血1m1 加Hanks 液1m1 稀释后，沿管壁徐徐滴流叠加盛有2m1 淋巴细胞分离液的试管内(注意勿与分离液混合，然后2000r／min 水平离心20min，管内分为4 层，自上而下依次为血浆，单个核细胞，颗粒白细胞、红细胞。用毛细管伸至单个核细胞层中(位于细胞分离液与血浆的界面上)，沿管壁轻轻吸出全部细胞。然后用Hanks 液洗两次