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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
充足
- 物种来源:
大鼠
- 细胞形态:
贴壁
- 运输方式:
活细胞/冻存管
- 规格:
详情电联
英文名:RGM1
细胞常规培养及传代
<1>细胞培养
①细胞请于细胞培养箱中培养,大部分细胞是37℃,5% CO2,湿度100%环境下培养的。有极少部分细胞培养条件不一致,请仔细阅读相应的细胞说明书,使用正确的培养基及培养条件。
②细胞于培养瓶或皿中培养,加入适量说明书上标注的细胞相应完全培养基(一般液面高度2-3mm即可)。
<2>细胞传代(以下步骤适用于10cm皿)
①细胞培养至密度达80%以上时即可传代,先将细胞培养基取出3mL用15mL离心管装好,其他培养基全部吸干舍弃;
②培养皿加入2-3mL无菌PBS,轻轻晃动皿,使PBS浸洗到皿底所有部位,PBS吸干舍弃;
③加入1mL胰酶,轻轻晃动皿,使胰酶浸没到皿底所有部位,将皿盖好放入培养箱中消化;
④3min后,显微镜下观察细胞,若大部分细胞不再贴壁,即可加入第一步收集的培养基混匀;若细胞还是贴壁,放回培养箱继续消化至不贴壁为止;
⑤将细胞悬液均匀分成几份,分别加入不同培养皿中,补加新培养基后放回培养箱培养。
<3>相关问题
①部分细胞在传代后时,会有以下现象:细胞内会有黑色小点、细胞间隙有些颗粒物、培养基漂浮一些死细胞或者细胞长的极慢。出现以上现象时,可以咨询本公司技术人员此现象是否正常及相关处理方式,不要频繁换液,大多数细胞1周换液2-3次即可。
②细胞碎片较多、背景较脏时,贴壁细胞用PBS漂洗两次、悬浮细胞打散后低速离心(900rpm,3min)能有效改善。
③传代比例建议1:2-1:3,长得比较快的细胞可以1:3,比较慢的按1:2传代。传代后,建议不要使用传代前培养所使用的培养基,会有大量细胞碎片甚至导致细胞死亡的风险。
④细胞状态不好或者生长极慢的时候,可以通过增加血清浓度调整细胞状态及生长速度。
⑤请不要随意更换培养基,因实验需要,可以逐步驯化。
⑥使用进口或者活力较强胰酶的客户请注意,消化过度或者吹打过于剧烈会导致细胞受损,从而导致细胞不贴壁或者死亡产生碎片,进而生长缓慢。应注意不要消化过长时间,建议1分钟以内(约30-40s),终止也要彻底,至少6倍胰酶体积的完全培养基终止,终止之后离心去除胰酶后再用新的培养基重悬后传代。
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文献和实验实验材料: 1. 新生大鼠唾液腺; 2. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素,pH7.2; 3. 培养用液:DMEM培养液,添加10%的胎牛血清、5μg/ml胰岛素、10 ng/ml表皮生长因子、50 ng/ml氢化可的松、100 IU/ml青霉素和100μg/ml链霉素。无Ca2+ 、Mg2+ 的D-Hanks液,使用时添加100 IU/ml青霉素和100μg/ml链霉素; 4. 鼠尾胶原液:先吸取4ml
实验材料: 1. 正常大鼠的肺组织; 2. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素,pH7.2; 3. 肺泡灌洗液Ⅰ:140 mmol/L NaCl、5 mmol/L KCl、2.5 mmol/L磷酸缓冲液、10 mmol/L HEPES、6 mmol/L葡萄糖和0.2 mmol/L EDTA。用无菌双蒸水配制,pH7.4,肺泡灌洗液使用时须预温到37℃; 4. 肺泡灌洗液Ⅱ:在灌洗液Ⅰ中加入2.0 mmol/L
胃液的显微镜检查是临床检验基础中比较重要的一个知识点,下面是医学教育网搜集整理的相关知识内容,请参考: 1.细胞 (1)红细胞:正常胃液无红细胞。插管损伤时出现少量红细胞无意义。胃液内有大量红细胞时,常提示胃可能有溃疡、糜烂、炎症和恶性肿瘤等。 (2)白细胞:正常胃液中白细胞约为(0.1~1.0)×109/L,多为中性粒细胞。白细胞>1.0×109/L时常有病理意义,见于胃黏膜的多种炎症。鼻咽部分泌物及痰液混入胃液时可见大量白细胞,同时还可见毛柱状上皮细胞和炭末
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