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BEAS-2B细胞

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  • ¥1680
  • ATCC,ECACC,ScienCell, DSMZ, RIKEN 等
  • 进口/国产
  • JNO171-05
  • 2026年04月28日
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      99

    • 细胞类型

      科研

    • 物种来源

      鼠/人/其它

    • 细胞形态

      上皮样/成纤维样/其它

    • 运输方式

      常温运输/干冰运输

    • 生长状态

      贴壁/悬浮

    • 规格

      25T

    吉奥蓝图是一家专注于生物医药的科研产品研究、开发、生产和销售的高科技企业。公司自成立以来便一直秉承“精品、专业、诚信、便捷”的宗旨和理念,不断的开拓进取,务实创新,收录与典藏了近千种各类细胞株/系,公司细胞主要来源ATCC,ECACC,ScienCell, DSMZ, RIKEN 等,以及少数国内外科研机构建系。其中自主研发建系各类示踪细胞、耐药株细胞、基因敲除细胞等百余种,客户遍及全国各地的医院、高校、药厂、科研机构等,产品质量与技术支持/服务体系深受广大客户信任和青眯。目前公司以细胞生物学产品为主体,陆续建立与开发了:细胞STR检测试剂盒、PDX人源肿瘤细胞异体移植技术、荷瘤动物/特殊疾病动物模型、原代细胞系构建、耐药株筛选、Cas9基因敲除株、示踪细胞筛选等新产品和技术体系,以期为广大客户提供更多更好的科研产品和服务。诚为基质为本协为赢,吉奥蓝图期待与您的合作……


    细胞常规说明:
    培养条件:89%基础培养基+10%FBS+1%双抗
    冻存液成分:10%DMSO+40%FBS+50%基础培养液
    细胞质检情况:不含细菌、真菌、支原体等微生物污染
    传代建议:1:2~1:3传代,2~3天换液1次
    特别提醒:签收细胞后,如细胞状态不佳,或培养中遇到问题,烦请当天尽快联系,以便处理。当天及时反馈细胞情况和细胞照片是售后跟踪处理重要的参考依据,请务必重视。

    悬浮细胞接收后的操作流程与注意事项
    1.如签收时出现培养瓶壁破裂,漏液等情况请及时做好照片记录并联系实验室
    2.拧松瓶盖,细胞瓶竖立培养8h(或过夜)
    3.待细胞沉底后吸除上层液体(含碎片残渣,请小心操作),然后吸取沉底的细胞层(2ML左右转移到新的培养瓶,加入新鲜的完全培养基(如细胞状态较差可将血清浓度调高到15%)继续培养

    悬浮细胞常规培养传代流程(请严格遵照无菌操作
    1.将培养瓶/皿中的细胞重悬混匀
    2.吸取2/3或者一半混匀后的细胞悬液到新的培养瓶/皿
    3.分别在原瓶/皿和新分瓶的培养瓶/皿加入等量或者2倍的新鲜培养基,使细胞密度保持在5 X10(5) /ml左右
    4.注意培养基PH值变化情况和细胞密度,定期半量换液(每周2-3次),待细胞密度大于2 X 10(6) /ml以后重复1项操作或者冻存

    贴壁细胞接收后的操作流程与注意事项
    1.收到细胞当天尽快更换新鲜完全培养基,第二天再进行消化处理
    2.如果细胞收到时呈悬浮或者部分悬浮的状态,请将悬浮的细胞即时离心,加15%血清的完全培养基到新的培养皿/瓶继续培养观察。同时原培养瓶中剩下的贴壁细胞更换为15%血清的完全培养基,培养观察
    3.若出现生长不均:贴壁细胞若出现分布不均,成岛状生长,可将细胞进行消化,重悬打散细胞,加入新鲜培养基进行培养

    贴壁细胞常规培养传代流程(请严格遵照无菌操作
    1.吸出原培养瓶中的培养基,PBS缓冲液润洗细胞两次,加适量0.25%胰酶进行消化细胞(注意把握消化时间)
    2.镜下观察消化情况,在细胞边缘缩小,贴壁松动时(不建议消化到细胞漂浮)去掉胰酶,加6~8ml 完全培养基,轻轻吹打细胞层,尽量把细胞层吹落,吹散
    3.取部分细胞悬液转移到新的培养皿/瓶中,添加适当的完全培养基,把细胞悬液打匀,于培养箱中培养
    4.注意培养基PH值变化情况,定期换液(每周2-3次),待细胞密度达到80%以后重复1项作或者冻存

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    • 免疫网络的其它模型

      上的Id可用抗IdAb或抗IdT细胞来鉴定。一般来说,TCR上的Id与Ig或BCR上的Id有所差别,这可能是TCRα、β链的V基因与Ig重链、轻链V基因同源性较低的原因。抗TCr Id也能模拟抗原而活化T细胞。最近研究表明,抗原特异性B细胞上Id不仅可被Ab2B细胞所识别,也可被独特型特异性Th、Ts或Tc所识别;同样抗原特异性T细胞上Id可被TCR特异性T细胞和Ab2 B细胞所识别,这可能与淋巴细胞V基因库中,TCRα、β链V基因库与BCR免疫球蛋白重量链和轻链V基因库有一定程度的同源性有关。

    • Methods to Detect Protein Glutathionylation

      Figure 6.17.1 Detection of global protein glutathionylation in GSSG‐treated BEAS‐2B cells by immunoblotting. BEAS‐2B cells in serum‐free DMEM/F12 medium were treated with 10 mM GSSG for 1 hr. Whole‐cell extracts were prepared using NP‐40 cell lysis

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