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- 玉研仪器
- CHINA
- 小动物足部炎症测量仪，小动物足底疼痛测量仪
- 2026年01月15日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 国食药监械注册号：
无
- 库存：
100
- 供应商：
玉研仪器公司
- 现货状态：
大小鼠足部炎症测量仪
- 保修期：
12个月
- 规格：
敬请来电咨询
小动物足底热点测量仪，用于测量大鼠、小鼠足底对热刺痛程度的反应，采用Hargreaves法，检测动物缩足潜伏期PWL。
疼痛甩尾和冷热板实验虽是急性疼痛热阈值的经典测量方法，这两种实验至今仍然被药理学研究采用。但这两种方法都有一些局限性，没有在痛觉过敏的行为反应研究中得到运用。
足底测试代表了一种先进的实验方法，它集合了疼痛过敏测试的优点
· 实验时，受试动物无拘束，可自由活动；
· 实验数据记录是仪器自动感应完成的，无需人为判断和记录；
· 通过聚焦红外光源于动物足底，按下开关，等待动物缩回受测足爪，仪器可自动记录红外光强度和持续时间；
· 红外光源设置了一个特殊的过滤器，能够过滤掉可见光谱，防止可见光干扰动物，影响实验结果；
· 带自检装置：反馈电路能够进行自检，能有效避免错误的实验环境；
· 实验数据会显示在液晶屏上，数据可导入U盘，或通过USB数据线导入至电脑。
· 文献引用量超过2000的足底热刺激设备；
· 数据在前板上显示，可以通过USB传送到电脑上，USB储存设备和软件都包含在标准的配件包里
型号：37370
产品特点：
· 可自动或手动记录爪缩回时间，不需要视觉评分，无差错，测量精确
· 触摸屏控制所有功能和结果查看
· 配备USB接口，可单独工作，也可连接电脑使用
· 带数据统计软件，可将CSV文件从直接导出到USB
· 爪缩回潜伏期的分辨率为0.1s
· 红外光强度01-99 级间可调
· 可选配红外热辐射校准仪用于校准红外光源
· 6只大鼠或12只小鼠同时进行实验
主机及测试光源
主要参数：
· 操作方式：按键
· 数据读取：液晶屏显示
· 红外光强度：01-99 级间可调
· 时间分辨率：0.1s
· 红外灯泡：Halogen "Bellaphot", Mod. 64607 OSRAM, 8V-50W
· 数据转移：闪存
· 电源：85-264 VAC, 50-60Hz
· 工作温度：15°- 30°C
· 噪音：< 70dB
· 校准：红外辐射计
· 规格：85x40x35 cm
· 鼠笼：尺寸20x20x14cm，数量3个
· 净重：13.0kg
可选配Durham大鼠束缚器，配合足底热点仪，用于大鼠下颌部三叉神经痛测试。
刺激强度值（红外热辐射值）对照表
（单位：mW/cm2）
方法学文献：
K.M. Hargreaves, R. Dubner, F. Brown, C. Flores and J. Joris: ”A New and Sensitive Method for Measuring Thermal Nociception in Cutaneous Hy-peralgesia” Pain 32: 77-88, 1988
D.C. Yeomans & H.K. Proudfit: ”Characterization of the Foot Withdrawal Response to Noxious Radiant Heat in the Rat” Pain 59: 85-97, 1994
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文献和实验《Science》
1.La Montanara, Paolo, et al. "Cyclin-dependent–like kinase 5 is required for pain signaling in human sensory neurons and mouse models." Science translational medicine 12.551 (2020): eaax4846.doi:10.1126/scitranslmed.aax4846
IF 19.32
2.Feng, Jiao, et al. "A new painkiller nanomedicine to bypass the blood-brain barrier and the use of morp*hine." Science advances 5.2 (2019): eaau5148.doi：10.1126/sciadv.aau5148
IF 14.96
3.Hsiao, Hung-Tsung, et al. "The analgesic effect of propofol associated with the inhibition of hypoxia inducible factor and inflammasome in complex regional pain syndrome." Journal of biomedical science 26 (2019): 1-11. doi:10.1186/s12929-019-0576-z
IF 12.77
4.Zhou, Luming, et al. "Reversible CD8 T cell–neuron cross-talk causes aging-dependent neuronal regenerative decline." Science 376.6594 (2022): eabd5926. doi: 10.1126/science.abd5926
IF 63.71
《Nature》
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IF 17.69
6.Landra-Willm, Arnaud, et al. "A photoswitchable inhibitor of TREK channels controls pain in wild-type intact freely moving animals." Nature Communications 14.1 (2023): 1160.doi:
IF 17.69
7.Nees, Timo A., et al. "Role of TMEM100 in mechanically insensitive nociceptor un-silencing." Nature Communications 14.1 (2023): 1899.
doi: 10.1038/s41467-023-36806-4
IF 17.69
8.Zhang, Qiaosheng, et al. "A prototype closed-loop brain–machine interface for the study and treatment of pain." Nature Biomedical Engineering (2021): 1-13. doi: 10.1038/s41551-021-00736-7
IF 29.23
9.Zhang, Su-Bo, et al. "CircAnks1a in the spinal cord regulates hypersensitivity in a rodent model of neuropathic pain." Nature communications 10.1 (2019): 4119.doi:1
10.IF: 17.69
11.Jiang, Wenhao, et al. "PGE2 activates EP4 in subchondral bone osteoclasts to regulate osteoarthritis." Bone research 10.1 (2022): 27. doi:10.1038/s41413-022-00201-4
13.36
12.Bao, Yi-Ni, et al. "The dopamine D1–D2DR complex in the rat spinal cord promotes neuropathic pain by increasing neuronal excitability after chronic constriction injury." Experimental & Molecular Medicine 53.2 (2021): 235-249.doi:10.1038/s12276-021-00563-5
IF 12.15
13.Takeda, Ikuko, et al. "Controlled activation of cortical astrocytes modulates neuropathic pain-like behaviour." Nature communications 13.1 (2022): 4100.doi: 10.1038/s41467-022-31773-8
IF 17.69
14.Liang, Hai-Ying et al. “nNOS-expressing neurons in the vmPFC transform pPVT-derived chronic pain signals into anxiety behaviors.” Nature communications vol. 11,1 2501. 19 May. 2020, doi:10.1038/s41467-020-16198-5 doi:10.1038/s41467-020-16198-5
IF 17.69
15.Zhou, Hang, et al. "A sleep-active basalocortical pathway crucial for generation and maintenance of chronic pain." Nature Neuroscience (2023): 1-12. doi: 10.1038/s41593-022-01250-y
IF 28.77
16.Wang, Yan et al. “TRPV1 SUMOylation regulates nociceptive signaling in models of inflammatory pain.” Nature communications vol. 9,1 1529. 18 Apr. 2018, doi: 10.1038/s41467-018-03974-7
IF 17.69
17.Iwasaki, Mai, et al. "An analgesic pathway from parvocellular oxytocin neurons to the periaqueductal gray in rats." Nature Communications 14.1 (2023): 1066. doi:10.1038/s41467-023-36641-7
IF 17.69
《Cell》
18.Zhang, Fang-Xiong et al. “BK Potassium Channels Suppress Cavα2δ Subunit Function to Reduce Inflammatory and Neuropathic Pain.” Cell reports vol. 22,8 (2018): 1956-1964. doi:10.1016/j.celrep.2018.01.073
IF 10.00
19.Gui, Xianwei et al. “Botulinum toxin type A promotes microglial M2 polarization and suppresses chronic constriction injury-induced neuropathic pain through the P2X7 receptor.” Cell & bioscience vol. 10 45. 23 Mar. 2020, doi:10.1186/s13578-020-00405-3
测定的时间也大致一样，如第一次在上午测定，以后均应在上午测定。（６）防止有大便阻塞和动物挣扎造成直肠损伤及出血现象。（７）测定时尽可能使动物处于自然状态，勿使其过于紧张、恐惧。三、脉搏的检查方法检查犬、猫、兔等较大动物的脉搏时，先将动物略加固定，待其安静后，用右手伸入动物股部内侧，用手指按股动脉测脉率1分钟，计算每分钟脉搏次数。小动物的脉搏不易摸测，可直接在动物左侧胸部用手触及心跳最明显处，计数一定时间，算出每分钟心跳次数，也可用听诊器或专用测量仪器进行测量。此外，在测量时应排除温度、湿度、动物
是放射免疫分析的主要试剂，常以抗原免疫小动物诱发产生多克隆抗体而得。抗血清的质量直接影响分析的灵敏度和特异性。抗血清质量的指标主要有亲和常数、交叉反应率和滴度。 1．亲和常数亲和常数（affinityconstant）常用K值表示。它反映抗体与相应抗原的结合能力。K值的单位为mol/L，即表示1mol抗体稀释至若干L溶液中时，与相应的抗原结合率达到50％。抗血清K值越大，放射免疫分析的灵敏度、精密和准确度越佳。抗血清的K值达到109～1012mol/L才适合用于放射免疫分析。 2．交叉
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