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热梯度痛觉测试仪,小动物温度梯度测试仪

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  • ¥50000 - 120000
  • Ugo
  • USA
  • 热梯度痛觉测试仪,小动物温度梯度测试仪
  • 2026年01月09日
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    • 国食药监械注册号

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      大量

    • 供应商

      玉研仪器公司

    • 现货状态

      现货,Bioseb 热梯度痛觉测试仪

    • 保修期

      12个月

    • 规格

      敬请来电咨询

    小鼠热偏好测试仪

    是一款根据凯瑟琳·齐默尔曼法设计,对小鼠综合热偏好表型进行分析的设备。

    温度感知和体温调节实验及相关分子机制是近年来的研究热点,目前现有的仪器在实际应用中有一定局限性。

    为了克服目前仪器的不足,基于论文“使用新型自动循环梯度分析对小鼠进行综合热偏好表型分析”(纽伦堡大学发表)的研究结果,我们设计了一种新型环状热梯度测试仪,用于热偏好表型分析。该设备已经在很多实验室得到好评。
     

    产品细节图片1
     产品特点:

    · 热偏好测试仪适用于神经性疼痛研究,能够在动物的热选择过程中识别探索行为;

    · 动物的热偏好选择具有很高的自由度,消除人为因素对结果的判断;

    · 热偏好测试仪的灵敏度高,无边界效应,无空间条件限制,确保了数据的无偏差性和可重复性;

    · 采用热梯度设计,能够更好地反映复杂生理环境、实验所需时间短、动物数量少;

    产品细节图片2

    产品主要特点 :

    · 环形设计:内径45cm,外径57cm;

    · 实验重复性好,无边界效应和空间限制;

    · 加热和制冷装置分别位于环形两端,形成精确的热梯度;

    · 嵌入式热传感器可实时测量和记录梯度温度;

    · 配备隔热处理的环形铝质跑道;

    · 单侧可定义12个区域;

    · 测试结果通过专用摄像机进行记录;

    · 使用ANYmaze专业行为分析软件进行数据分析;

    · 包含4个可见光和红外灯;

    仪器说明:

    · 热偏好测试仪由一个环形轨道组成,环形轨道一侧装有加热器,另一侧是制冷装置:分别加热和冷却环形轨道的两端,产生对称的热梯度,通过4个嵌入式热传感器精确测量不同区域的温度;

    · 根据不同的温度梯度将环形轨道分成12个区域,在之前提到的方法论文中,预设两端温度分别为15°C和40°C,温度在极冷区(15°C)和极热区(40°C)之间形成热温度梯度,相邻两个区域温度增加量为2.27°C

    · 小鼠在环形轨道中自由活动;

    · 使用专用摄像机在可见光或者红外光态下进行采集和记录;


    产品细节图片3

    数据分析:

    使用ANYmaze行为分析软件对动物的热偏好行为进行记录和分析

    · 各区域温度偏好时间

    · 在某一特定温度区域的延迟时间(时间进程)

    · 区域直方图

     

    产品细节图片4

     

    温度控制:

    在加热器/制冷器的面板上,可精确控制温度

    加热单元:室温至65℃

    加热/制冷单元:4℃至35℃

    参考文献:

    · F. Touska Z. Winter, A. Mueller, V. Vlachova, J. Larsen and Katharina Zimmermann: “Comprehensive thermal preference phenotyping in mice using a novel automated circular gradient assay” J.Temperature, Vol 3 (1) 2016

    · Z. Winter, P. Gruschwitz, S. Eger, F. Touska and Katharina Zimmermann: “Cold Temperature Encoding by Cutaneous TRPA1 and TRPM8-Carrying Fibers in the Mouse” Front. Mol. Neurosci., 2017

    · Comprehensive thermal preference phenotyping in mice using a novel automated circular gradient  assayy.  Filip Touskaa,b,z, Zoltan Wintera,z

    · Prodromal sensory neuropathy in Pink1−/−SNCAA53T double mutant Parkinson mice. Lucie Valek

     

    大鼠、小鼠热逃逸实验仪(TPP实验)

    这是一套评估动物热敏感性的工具,可以测试实验动物对不同区域、不同温度热刺激的学习能力和综合反应。
    在传统的冷/热板实验中,是通过人为判断的动物行为,如抬足、跳跃等反应,得到动物的反应时间和疼痛阈值。而在热逃逸实验中,无需进行人为判断,动物自由选择自己偏好的温度环境和位置,最终得到疼痛阈值的测试结果。
    也可选用ANYmaze行为分析软件,获得更多有关动物行为的详细信息,如:动物在不同温度区域的时间,更换活动区域的行为,活动路径和跑动距离和区域活动距离等。


    主要特点:

    · 热逃逸实验,也可以叫做温度选择测试,可监测大鼠、小鼠对温度偏好,进而评估动物的疼痛阈值;

    · 实验是在动物无拘束的状态下进行:在不同温度的两个隔室之间,动物可自由活动,来选择偏爱和舒适的位置停留;

    · 动物通过学习或探索逃到另外一侧来减少疼痛,设备可以记录动物逃避不舒适或有害的冷/热板的行为;

    · 可用来测试和记录逃逸潜伏期;
     

    产品细节图片5

    型号:35250
    主要参数:

    · 冷热板控温范围:-5.0°C 到65.0°C ,步进0.5°C (精度0.1°C )    
    · 热板控温范围:室温至65°C
    · 精确度:+/- 0.1°C
    · 操控:4″3 触摸屏,用于设置和监控测试;
    · 两种工作模式:固定温度测试,变温测试用于动态实验;
    · 数据拷贝:标配USB拷贝功能,也可通过USB接口连接到电脑;


    热逃逸测试仪(TPP实验)的主要硬件:

    · 冷热板,控温范围:-5至65℃
    · 附加热板,控温范围:室温设至65℃
    · 特殊的动物活动笼;
    · 连接冷热板和附加热板的大、小鼠通道;

     

    产品细节图片6

     

    · 在18-24℃的室温范围内,都可以达到-5至65℃的温控范围;
    · 两种工作模式可选:固定温度,按照一定的升温/降温速度进行测试;
    · 小鼠活动笼开口尺寸:45x95mm,金属桥连廊宽度:4cm;
    ·  大鼠活动笼开口尺寸:87x110mm,金属桥连廊宽度:8cm;
    · 冷热板一侧的活动笼配备防止凝雾的盖板;

     

    产品细节图片7

    参考文献:

    ·  Aziz Moqrich et alia: “Impaired Thermosensation in Mice Lacking TRPV3, a Heat and Camphor Sensor in the Skin”Science 04 Mar 2005: Vol. 307, Issue 5714, pp. 1468-1472  DOI: 10.1126/science.1108609

     

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    图标文献和实验
    该产品被引用文献

    1.Lei J, Yoshimoto RU, Matsui T, Amagai M, Kido MA, Tominaga M. Involvement of skin TRPV3 in temperature detection regulated by TMEM79 in mice. Nat Commun. 2023;14(1):4104. Published 2023 Jul 20. doi:10.1038/s41467-023-39712-x(IF=16.6)

    2.Chuong V, Farokhnia M, Khom S, et al. The glucagon-like peptide-1 (GLP-1) analogue semaglutide reduces alcohol drinking and modulates central GABA neurotransmission. JCI Insight. 2023;8(12):e170671. Published 2023 Jun 22. doi:10.1172/jci.insight.170671(IF=8.0)

    3.Ujisawa T, Sasajima S, Kashio M, Tominaga M. Thermal gradient ring reveals different temperature-dependent behaviors in mice lacking thermosensitive TRP channels. J Physiol Sci. 2022;72(1):11. Published 2022 May 26. doi:10.1186/s12576-022-00835-3(IF=2.3)

    4.Valek L, Tran BN, Tegeder I. Cold avoidance and heat pain hypersensitivity in neuronal nucleoredoxin knockout mice. Free Radic Biol Med. 2022;192:84-97. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2022.09.010(IF=7.4)

    5.Valek L, Tran B, Wilken-Schmitz A, et al. Prodromal sensory neuropathy in Pink1-/- SNCAA53T double mutant Parkinson mice. Neuropathol Appl Neurobiol. 2021;47(7):1060-1079. doi:10.1111/nan.12734(IF=5.0)

    6.Winter Z, Gruschwitz P, Eger S, Touska F, Zimmermann K. Cold Temperature Encoding by Cutaneous TRPA1 and TRPM8-Carrying Fibers in the Mouse. Front Mol Neurosci. 2017;10:209. Published 2017 Jun 30. doi:10.3389/fnmol.2017.00209(IF=4.8)

    7.Richardson RS, Sulima A, Rice KC, et al. Pharmacological GHSR (ghrelin receptor) blockade reduces alcohol binge-like drinking in male and female mice. Neuropharmacology. 2023;238:109643. doi:10.1016/j.neuropharm.2023.109643(IF=4.7)

    8.Bertamino A, Ostacolo C, Medina A, et al. Exploration of TRPM8 Binding Sites by β-Carboline-Based Antagonists and Their In Vitro Characterization and In Vivo Analgesic Activities. J Med Chem. 2020;63(17):9672-9694. doi:10.1021/acs.jmedchem.0c00816(IF=7.3)

    9.Vogel A, Ueberbach T, Wilken-Schmitz A, et al. Repetitive and compulsive behavior after Early-Life-Pain associated with reduced long-chain sphingolipid species. Cell Biosci. 2023;13(1):155. Published 2023 Aug 27. doi:10.1186/s13578-023-01106-3(IF=7.5)

    10.Valek L, Tran B, Wilken-Schmitz A, et al. Prodromal sensory neuropathy in Pink1-/- SNCAA53T double mutant Parkinson mice. Neuropathol Appl Neurobiol. 2021;47(7):1060-1079. doi:10.1111/nan.12734(IF=5.0)

    11.Sasajima S, Kondo M, Ohno N, et al. Thermal gradient ring reveals thermosensory changes in diabetic peripheral neuropathy in mice. Sci Rep. 2022;12(1):9724. Published 2022 Jun 13. doi:10.1038/s41598-022-14186-x(IF=4.6)

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