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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
大量
- 供应商:
泽叶生物
- 肿瘤类型:
见说明书
- 细胞类型:
细胞系
- 品系:
见说明书
- 组织来源:
正常卵巢
- 相关疾病:
见说明书
- 物种来源:
人
- 免疫类型:
见说明书
- 细胞形态:
贴壁;上皮细胞样
- 是否是肿瘤细胞:
否
- 器官来源:
人
- 运输方式:
干冰运输及发送复苏存活细胞
- 年限:
2年
- 生长状态:
贴壁
- 规格:
株
| 产品编号 | 名称 | 规格 | 价格 | 产品说明书 |
|---|---|---|---|---|
| ZY-T017 | CHO/dhFr-;仓鼠卵巢细胞,二氢叶酸还原酶缺陷 | 1×10^6 cells/瓶 | 询价 | 下载 |
细胞名称:CHO/dhFr- 仓鼠卵巢细胞(二氢叶酸还原酶缺陷)
组织来源:正常卵巢
培养条件:IMDM+10% FBS+0.1mM次黄嘌呤+0.016mM胸腺嘧啶+200nM氨甲喋呤
形 态:贴壁;上皮细胞样
细胞培养步骤
一.培养基及培养冻存条件准备:
1) 准备培养基;北美胎牛血清,10%;双抗1%。
2) 培养条件: 气相:空气,95%;二氧化碳,5%。 温度:37摄氏度,培养箱湿度为70%-80%。
3) 冻存液:90%血清,10%DMSO,现用现配。液氮储存。
二. CHO/dhFr-细胞处理:
1) 复苏细胞:将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入4mL培养基混合均匀。在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入培养瓶中培养过夜(或将细胞悬液加入10cm皿中,加入约8ml培养基,培养过夜)。第二天换液并检查细胞密度。
2) 细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。
对于贴壁细胞,传代可参考以下方法:
弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
1. 加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于37℃培养箱中消化1-2分钟,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若CHO/dhFr-细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加少量培养基终止消化。
2. 按6-8ml/瓶补加培养基,轻轻打匀后吸出,在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。
3. 将细胞悬液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。
细胞冻存:待细胞生长状态良好时,可进行细胞冻存。
下面T25瓶为例;
1.细胞冻存时,弃去培养基后,PBS清洗瓶底1-2次后加入1ml胰酶,细胞变圆脱落后,加入2ml完全培养基终止消化,可使用血球计数板计数。
2.1000RPM离心5分钟去掉上清。用血清重悬浮,加DMSO至最终浓度为10%。加入DMSO后迅速混匀,按每1ml的数量分配到冻存管中,注意冻存管做好标识。本公司按每个冻存管细胞数目大于1X106个细胞冻存。
3.将冻存管置于程序降温盒中,放入-80度冰箱,至少2个小时以后转入液氮灌储存。记录冻存管位置以便下次拿取。
注意事项:
1. 收到CHO/dhFr-细胞后首先观察细胞瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现象发生请及时和我们联系。
2. 先不开瓶盖,瓶身擦拭酒精后放在培养箱静置数小时(4h左右),稳定细胞状态,切忌在温箱内静置过夜。
3. 静置后镜检,拍照,记录细胞状态。建议传代后也拍照记录细胞生长情况。
4. 贴壁细胞:若细胞密度超过80%,可正常传代;若未超过80%,收集细胞瓶内的培养基,留8ml继续培养至80%左右再传代,瓶盖可稍微拧松。
5. 细胞瓶内的培养基含血清和双抗,可收集后4℃保存备用,可补加2%血清。刚开始传代时建议一半用细胞瓶内的培养基,一半用客户自备的培养基,使细胞逐渐适应培养条件,以免因不适应而造成生长状态不佳。
6. 细胞胰酶消化液建议使用PBS配制,
7. 因为细胞培养过程外因太多,所以我们的售后保障期为一周,超过一周的细胞我们会酌情处理,但不提供免费更换服务。
CHO/dhFr-细胞运输和保存:可选择干冰运输及发送复苏存活细胞方式:(1)干冰运输,收到后立即转入液氮冻存或直接复苏;(2)存活细胞,收到后应继续生长,传代达到细胞生长状态良好时,再进行冻存。具体操作见细胞培养步骤。
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文献和实验血清浓度。一步到位法就是省去中间的步骤,直接由起点的血清浓度到终点浓度。4、问:我要做稳定转染,表达融合蛋白并将蛋白质纯化来检测其功能。仅仅把目的基因插入pcDNA3.1,没有插入其他的基因或者tag。现准备转染CHO细胞。就相关问题想问问:有的文献上没有署名K1或是DHFR,普通所写的CHO细胞是指那种?野生型CHO细胞又是指的哪种?这三种细胞是不是因为CHO-K1和CHO/DHFR-有扩增基因GS 和DHFR,可以更为有效的扩增进而表达,比野生型CHO在转染中更起作用?如果就我的实验要求,CHO
尚待进一步研究。在这项工作中,我们报告了逐渐增加渗透压来增加 CHO 细胞分批培养中单克隆抗体的生产率。我们修改了 CHO 细胞补料批次操作规程,以探索渗透压逐渐升高对整体单克隆抗体生产的影响。最后高渗条件可能会影响产物糖基化,因此对补料 MAb 产品的聚糖谱进行了分析,以评估此类处理对蛋白质产品质量的影响。2 结果与讨论2.1 培养渗透压的逐步提高对分批补料生产率的综合影响据报道,增加的渗透压在分批条件下会影响培养效率,因此,使用渗透压为 325、400 和 500 mOsm / kg 的培养
编码的序列转录为mRNA,从而获得抗性产物氨基糖苷磷酸转移酶的高效表达,使细胞获得抗性而能在含有G418的选择性培养基中生长。neo基因为非扩增性选择基因,不影响目的基因拷贝数。G418筛选系统已在基因转移、基因敲除、抗性筛选以及转基因动物等方面得以广泛应用,与之作用原理相似的还有潮霉素和嘌呤霉素筛选系统。 而在生物医药领域中主要是利用CHO细胞的GS或DHFR 筛选系统进行抗体药物、重组蛋白等的生产。 CHO表达系统 CHO表达系统是目前应用最广泛的真核表达系统之一,与其他表达系统相比
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