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美国2B 211 无洗刮臭氧检测仪

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  • ¥100000
  • 美国2B
  • 美国
  • 211
  • 2025年07月15日
    • 详细信息
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    • 技术资料
    • 保修期

      1年

    美国2B 211 无洗刮臭氧检测仪

    仪器介绍

    新款的Model 211 无洗刮臭氧检测仪采用可靠的紫外吸收法,创新的气相洗刮技术来测量臭氧,不受外界干扰。在参考模式下,仪器使用臭氧或者一氧化氮的反应有选择性地去掉样品中的臭氧。反应的数量级高于周围气体,因此可单独清除臭氧而不会干扰其他吸收紫外气体的混合物。仪器尤其适用于严重污染的大气环境中臭氧的检测,微粒物质、汞,已及各类挥发性有机物对仪器影响不大。这款臭氧检测仪结合了双光束臭氧检测仪的稳定性和优质的洗刮技术,可在空气污染最严重的大气中提供精确的臭氧检测。

    美国2B 211 无洗刮臭氧检测仪

    气相洗刮技术采用一氧化氮和臭氧进行定量反应,并将臭氧清除出样品。这种反应一直被用作一种气相滴定法来检测一氧化氮或者臭氧。在无洗刮臭氧检测仪内,样品会加入低浓度的一氧化氮以便产生无臭氧的参考空气。光强度在参考和样品模式下测量,臭氧浓度根据比尔定律直接计算。一氧化氮由外部的一氧化氮气缸提供,气缸还将提供长达一年的气体供给。此外,一氧化氮还能在仪器内依靠一个可选择的发电器光解一氧化氮或者依靠外部气缸产生,这样产生的一氧化氮无毒、无腐蚀性,且相对便宜。

    所有2B公司的气体检测仪都可通过RS-232提供远程仪器操作,平均时间2秒至1小时,模拟输出02.5伏,电流输出420毫安,内部数据记录器,可选闪存。数据显示和绘图软件允许持续地数据展示及离线分析。

    美国2B 211 无洗刮臭氧检测仪

    技术参数:

    敏感度漂移: <0.5%/ <3%/

    测量时间和频率: 2 0.5赫兹

    平均时间 : 10秒,1分钟,5分钟,1小时

    内存储器容量 : 16,333行(10秒平均等于1.9天;1分钟平均等于11天;5分钟平均等于1.9个月,1小时平均等于1.9年);使用USB闪存盘,实际容量不限

    臭氧单位: ppb, ppm, pphm, μg m-3, mg m-3

    压力单位 : mbar, torr

    温度单位: , K

    TP修正:

    工作温度: 10~50

    工作高度范围 : ~0-30km

    电源要求(电池供电或者110/220V交流电电源组): 11-14V直流电或者120/240V交流电,0.67A12V),8W

    尺寸 : 架装安装:43×37×14cm

    重量: 14.3磅(6.5kg

    数据输出: USB, RS232, 0-2.5 V模拟, 可选 4-20 mA 模拟

    数据传输波特率 : 2400,4800,19200

    输出范围 : 用户通过菜单上的换算系数自定义

    DewLine? :

    耐用泵 : 是,20,000小时

    流量计 :

    可选附件 : GPS,灯具加热器,无线数据传输蓝牙

    风险提示:丁香通仅作为第三方平台,为商家信息发布提供平台空间。用户咨询产品时请注意保护个人信息及财产安全,合理判断,谨慎选购商品,商家和用户对交易行为负责。对于医疗器械类产品,请先查证核实企业经营资质和医疗器械产品注册证情况。

    图标文献和实验
    相关实验
    • 肿瘤细胞培养方法简介

      一、机械除法1、标记:镜下观察,用不脱色笔在培养瓶皿的背面圈下生长肿瘤细胞的部位。2、刮除:弃掉培养液,把无菌胶伸入瓶皿中,肉眼或显微镜窥视下,刮除无标记空间。3、用Hanks液冲洗一两次,除被刮掉的细胞。4、注入培养液继续培养,如发现仍有成纤维细胞残留,可重复刮除至完全除掉为止。二、反复帖壁法1、待细胞生长达一定数量后,倒出旧培养液,用胰酶消化后,Hanks冲洗2次,加入不含血清的培养液,吹打制成细胞悬液。2、取编号为A、B、C三个培养瓶。首先把悬液接种入A培养瓶中,置温箱中静止

    • 细胞生物基本方法:肿瘤细胞培养

      伸入瓶皿中,肉眼或显微镜窥视下,刮除无标记空间。 3. 用 Hanks 液冲洗一两次,除被刮掉的细胞。 4. 注入培养液继续培养,如发现仍有成纤维细胞残留,可重复刮除至完全除掉为止。 2) 反复帖壁法 1. 待细胞生长达一定数量后,倒出旧培养液,用胰酶消化后, Hanks 冲洗 2 次,加入不含血清的培养液,吹打制成细胞悬液。 2. 取编号为 A 、 B 、 C 三个培养瓶。首先把悬液接种入

    • 肿瘤细胞培养方法

      一、机械除法 1.标记:镜下观察,用不脱色笔在培养瓶皿的背面圈下生长肿瘤细胞的部位。 2.刮除:弃掉培养液,把无菌胶伸入瓶皿中,肉眼或显微镜窥视下,刮除无标记空间。 3.用Hanks液冲洗一两次,除被刮掉的细胞。 4.注入培养液继续培养,如发现仍有成纤维细胞残留,可重复刮除至完全除掉为止。 二、反复帖壁法 1.

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