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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 免疫原:
见说明书
- 亚型:
见说明书
- 形态:
液态/粉末
- 保存条件:
-20oC
- 克隆性:
多克隆
- 标记物:
未标记
- 适应物种:
见说明书
- 宿主:
Rabbit,兔
- 应用范围:
WB, ICC, IHC-P, IHC-F, ELISA
- 浓度:
200ug/ml
- 靶点:
见说明书
- 抗体英文名:
Polyclonal Antibody to Octamer Binding Transcription Factor 4 (OCT4
- 抗体名:
八聚体结合转录因子4(OCT4)多克隆抗体
| Organism species | Rattus norvegicus (Rat) |
| Product No. | XYA424Ra01 |
| Clonality | Polyclonal |
| Host | Rabbit |
| Immunoglobulin Type | IgG |
| Purification | Affinity Chromatography |
| Applications | WB, ICC, IHC-P, IHC-F, ELISA |
| Concentration | 200ug/ml |
| UOM | 100ug |
| Conjugate | No Conjugate |
Immunocytochemistry in formalin fixed cells: 1:50-500
Immunohistochemistry in formalin fixed frozen section: 1:50-500
Immunohistochemistry in paraffin section: 1:10-100
Enzyme-linked Immunosorbent Assay: 1:100-1:5000
Optimal working dilutions must be determined by end user.
containing 0.02% NaN3, 50% glycerol.
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文献和实验比较常见的。在不同的细胞环境下,某个转录因子经历不同的修饰(如磷酸化和去磷酸化,或者通过与其它蛋白的结合),可获得不同的转录活性。在真核细胞中,抑制或激活难以由单一蛋白来实现,通常依靠“团队”复合体来完成。 但是难于理解的地方在于:在同样的胞内环境中,同样的转录因子(如上面提到的Oct4)行使了相反的功能。如下图。 个人想到的解释是: 1: 转录因子与DNA序列的结合改变了自身构象,从而改变了其对沉默或激活复合物的亲和力; 2: 与其它转录因子的协同作用决定是激活
四因子作用那么,是否可以直接应用相关转录因子对体细胞进行重编程而逆转终未分化细胞的发育潜能, 进而表现出ES细胞那样的多潜能性呢?Takahashi和Yamanaka{4}选择24种在小鼠早期胚胎ES细胞或者肿瘤细胞中丰富表达的转录因子, 通过筛选、组合, 发现用Oct4, Sox2, c-Myc和Klf4 4个因子(这4个因子也被称为Yamanaka因子)可以有效地将胎鼠成纤维细胞(mouse embryonic fibroblast, MEF细胞)和小鼠尾尖成纤维细胞诱导形成形态和生长
是因为其高稳态表达水平是通过转录本高稳定性的积累来实现的。 在ESCs中,多能状态主要由少量增强子相关的主要转录因子控制,包括Oct4、Sox2和Nanog,它们驱动维持ESC状态所必需的靶基因的表达。结果显示,在s4U-标记实验中,Oct4、Sox2和Nanog (OSN) 调控的靶基因在T > C reads中有很高的水平(图5b)。从全局来看,与4,994个近端不含OSN增强子的基因相比,含OSN增强子的2029个基因(>5 cpm)的转录本产生的 T> Creads显著增高 (Mann–
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