- ¥1850 - 3980
- 美国ATCC
- YB-ATCC-4071
- 美国
- 2025年07月16日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
大量
- 供应商：
钰博生物
- 细胞类型：
复苏
- ATCC Number：
详见官方网站
- 组织来源：
见说明书
- 物种来源：
人、大鼠、小鼠、、、、
- 免疫类型：
请咨询销售人员
- 细胞形态：
上皮样；多角形
- 是否是肿瘤细胞：
见说明书
- 器官来源：
见说明书
- 运输方式：
干冰运输or活细胞运输
- 年限：
见说明书
- 生长状态：
贴壁生长
- 规格：
1ml/株
细胞种类：EPO-CHO-T细胞,ATCC细胞
培养的天数：传代后3d
放大倍速：倒置显微镜 放大倍数：X10、X25
培养基种类：Grace+10%胎牛血清；
EPO-CHO-T细胞,ATCC细胞状态与特征简述:细胞悬浮生长，呈梭形，生长速度快，2d～3d又可传 代
EPO-CHO-T细胞,ATCC细胞软琼脂集落形成试验
本法适用于非锚着依赖性生长的细胞，如骨髓造血干细胞、肿瘤细胞株、转化细胞系。利用琼脂液无粘着性又可凝固的特性，将肿瘤细胞混入琼脂液中，琼脂液凝固使肿瘤细胞置于一定位置，琼脂中肿瘤细胞可能向周围作全方位的移动，因此可以用来检测肿瘤细胞的主动移动能力。肿瘤细胞在适宜培养基中又可以增殖，从而可以测定肿瘤细胞克隆形成率。造血系统软琼脂集落形成试验方法相同，主要用于有关细胞分化的研究，但使用培养基不同。
（1）同上（1）~（3）步骤。
（2）调整细胞悬液密度为1×103个/ml细胞。
（3）EPO-CHO-T细胞,ATCC细胞制备底层琼脂，完全溶化的5%琼脂和 37℃ 左右预温的新鲜完全培养液以1：9比例在 40℃ 均匀混合，加入培养皿（直径 60mm ）中，每皿含0.5%琼脂培养基2ml，室温下琼脂完全凝固。
（4）制备上层琼脂,取 37℃ 不同密度梯度(按照每皿含50、100、200个)的细胞悬液1.5ml移入小烧杯中，加入 40℃ 、5%琼脂等体积混匀，即成0.25%半固体琼脂培养基。配好的半固体琼脂培养基立即加入铺有底层琼脂的培养皿中，室温下琼脂凝固。 37℃ 、5%CO2静置培养2-3周。
EPO-CHO-T细胞,ATCC细胞相关细胞如下：
YB-ATCC-5383 人鼻咽癌细胞（低分化） CNE2细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5384 人鼻咽癌细胞,SUNE1细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5385 人鼻咽癌细胞,HONE-1细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5386 人鼻咽癌细胞,HNE3细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5387 人鼻咽癌细胞,HNE-2细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5388 人鼻咽癌细胞,HNE1细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5389 人鼻咽癌细胞,CNE细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5390 人鼻咽癌细胞,CNE-2Z细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5391 人鼻咽癌细胞,CNE-1细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5392 人鼻咽癌细胞,6-10B细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5393 人鼻咽癌细胞,5-8F细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-5394 人鼻咽癌母系细胞,CNE-2Z细胞 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
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文献和实验CSF（GM-CSF）、多重集落刺激因子（multi-CSF,又称IL-3）、干细胞因子（SCF）、红细胞生成素（EPO）。有人将IL-5称为嗜酸性粒细胞集落刺激因子（Eo-CSF)。此外，IL-1、IL-6和IL-11在骨髓多能干细胞早期的分化中也有重要的作用。 （一）IL-3 1981年Ihle等发现ConA刺激小鼠脾细胞的培养上清中含有一种因子，能提高裸鼠脾脏淋巴细胞成熟淋巴细胞标志20-α-羟固醇脱氢酸（20-α-hydroxysteriod dehydrogenase,20
，但对细胞的DNA合成并汉骨促进作用。CFU-E中的红系干细胞在无EPO存在的条件下培养16小时，70%的DNA被降解，在EPOSCF存在的条件下，DNA的降解比率分别为3%和42%。 （二）T细胞 1.胸腺细胞的发凋谢 淋巴干细胞通过血流进入胸腺，在胸腺中的发育成熟过程中要发生基因的重排和分化，同时，胸腺细胞要经历严格的选择过程，只有那些对自身MHC分子亲和力较高的细胞克隆才被允许发育为CD4+和CD8+双阳性细胞（阳性选择）。其中那些对自身抗原和力较高的胸腺细胞必须清除（阴性
-spleen,CFU-S）。集落数与输入的细胞数成正比，它可分化发育为红细胞、粒细胞及巨核细胞。CFU-S长期以来用体内集落法进行检测。 在70年代后Johnson和Metcalf等应用鼠胎肝细胞体外培养法，证明具有CFU-S性质的干细胞可在体外培养成功，这是在研究干细胞方法学上的重大改进。 其后，Haral等用小鼠骨髓细胞在甲基纤维素中加入红细胞生成素（erythropoietin,EPO）及脾 细胞培养 上清，进行体外培养，可形成含有红细胞、巨核细胞
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