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- 小鼠氧消耗测量仪,小鼠呼吸代谢测量
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- 2026年01月23日
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小动物新陈代谢测量系统 主要用来测量小动物的氧消耗，二氧化碳生成，获得清醒动物（大鼠、小鼠）的新陈代谢参数，对新陈代谢数据进行测定分析，无须任何侵入式手术。
呼吸气体分析仪从体积描记腔体的出口和入口采集气体浓度信号。O2和CO2浓度的变化被实时监测，并被用来计算VO2（氧消耗）、VCO2（二氧化碳产生）、RQ、MR等参数。
使用间接量热法来测量大鼠、小鼠的能量消耗、氧气消耗 (VO2) 和二氧化碳产生 (VCO2) 。包括人类在内的大型动物可以使用带有用于流量测量的呼吸器和用于气体分析仪的样品端口的贴合面罩最方便地进行监测。但是对于啮齿动物等小型动物，这种方法很难或不可能成功实施，而是使用代谢室代替。
代谢室可以是一个密封的小型舱体，新鲜空气 (Vi) 以已知的和设定的流速流过腔室，动物在密封舱体内呼吸，消耗 O2，同时通过代谢活动产生 CO 2，密封舱体的出口气体的 O 2浓度（FoO2）会低于进气口， CO 2浓度（FoCO2）会高于进气口。调节通过腔室的流速 (Vi) 以使腔室中的 CO 2不对于积聚。在这个过程中，0.2 – 1.0% 的 FoCO2/FiCO2 差异就足够被检测到。调节腔室流量 (Vi) 直到 FoCO2 进入到检测范围。通过测量Vi、FiO2、FiCO2、FoO2 和 FoCO2 等数据，我们就可以计算出：耗氧量 (VO2)、CO2 产出量 (VCO2)、呼吸交换率 (RER) 和代谢热产量或能量消耗 (EE)。
型号：GEMINI
实验装置
受控流量 (Vi)可调可控，并由流量计监控。气体分析仪在腔室的入口还是出口测量 O 2和 CO 2，具体取决于旋塞阀的设置。 由于代谢方程需要准确并且需要准确的入口和出口气体测量值，因此分析仪会定期在监测入口、参考气体（FiO2、FiCO2）和出口气体（FoO2、FoCO2）之间切换，使用旋塞阀选择气体样品源。这种技术可以纠正测量中的任何微小漂移或绝对不准确；得出很重要的差分值数据（FiO2 – FoO2 和 FoCO2 – FiCO2）。
GEMINI型新陈代谢研究系统运行示意图
主要特点：
· 应用于药物代谢研究及呼吸暂停（睡眠）研究，并广泛应用于药物毒力学研究；
· 可以根据实验需要，配置单通道、双通道、八通道、十六通道配置，同时对多只动物进行代谢测量；
· 软件可进行线性分析和统计，最多可同时监控8个呼吸箱体；
· 可根据动物的体重选择合适大小的箱体；
· 采用顺磁法进行氧气的测量和分析；
· 采用红外线频射法进行二氧化碳的测量和分析；
· 采用固态热能流量进行气体流量的检测；
· 可自动在多只体积描记箱中顺序采样；
· 系统可自动校准，操作方便。
其他注意事项
· 从理论上讲，任何通过带有活体动物密封舱的气体流速都会导致 O 2下降和 CO 2增加。然而，入口/出口气体差异越大，结果就越准确（在合理范围内）
呼吸代谢的计算方式，请参考：
· 最好使用单组气体传感器，来测量参考气体和腔室出口气体浓度。这样可以在入口/出口样本值之间进行直接比较。在原理图中，一个三通旋塞用于在监测参考气体或出口气体之间切换。可以使用一个三通电动电磁阀来代替，以通过远程控制选择样品源，使用这种方法在采样参考气体和一个或多个代谢室的出口之间多路复用一组传感器；
· 代谢测量和结果的单位可以使用 ml/min、ml/min/g 或 L/h/kg 或任何组合。大多数值可以通过简单的乘法或除法 进行轻松转换
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文献和实验1.Orthofer, Michael, et al. "Identification of ALK in Thinness." Cell 181.6 (2020): 1246-1262.doi: 10.1016/j.cell.2020.04.034
IF 66.85
2.Trendafilova, Teodora, et al. "Sodium-calcium exchanger-3 regulates pain “wind-up”: From human psychophysics to spinal mechanisms." Neuron 110.16 (2022): 2571-2587. doi:
IF 18.69
3.Cao, Chenxi, et al. "Cholesterol-induced LRP3 downregulation promotes cartilage degeneration in osteoarthritis by targeting Syndecan-4." Nature Communications 13.1 (2022): 7139. doi: 10.1038/s41467-022-34830-4
IF 17.69
4.Prieto, Martin, et al. "Light activated pulsatile drug delivery for prolonged peripheral nerve block." Biomaterials 283 (2022): 121453. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121453
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5.Hou, Yiwen, et al. "Coordinated activity of a central pathway drives associative opioid analgesic tolerance." Science Advances 9.6 (2023): eabo5627. doi:
IF 14.96
血压测量方法分为直接测量法和间接测量法一、间接测量法也就是常说的尾压法（Tail-cuff法）。将传感器套在老鼠尾部，通过充气、放气对尾动脉加压和释压的同时监测血流信号，得出血压值。优点：无创，不需手术。把老鼠固定在特定的保温装置内，尾巴上套上传感器，从固定到得出结果只需3-10分钟。尤其适用于每隔数天就需要重复测量的实验。不足：①测量的是某个时间点的血压，不能得到连续的血压曲线，无法监测血压微小的变化②舒张压的准确度有待商榷。有文献报道，将间接法和直接法比较，74%的舒张压误差大于
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气道高反应性（AHR） 测量和支气管肺泡灌洗（BAL）液抽样是必不可少的试验性哮喘模型 ，但在同一只动物身上重复此程序以获得测量结果一般不可行，因此我们发展了一种从小鼠身上获得重复AHR测量结果和BAL液标本的新方法。0:00 适于小鼠气道阻力测量和支气管肺泡灌洗液抽样的可逆的，非侵入性的实验方法 0:21 内容订阅 0:49 内容简介 1:21 小鼠插管 3:39 设置静脉注入路线 5:06 气道阻力测量 6:22 支气管肺泡灌洗 7:44 气道阻力测量结果 9:16
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