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文献和实验辨越好,不同的凝胶具有不同的推荐上样体积,如下表:凝胶类型 推荐上样体积(%Vt)Sephadex 2-5%Sepharose 2-5%Sephacryl HR 1-2%Superdex PG 1-2%Superose PG 1-2%Superdex 0.5%Superose 0.5%对于利用Sephadex G25进行蛋白质脱盐的特殊情形,样品量达到柱体积的25%仍可以保证蛋白与盐分开。d、洗脱流速:一般较低的流速下(5~10cm/h)分辨率较高,但Superdex PG,Sepharose FF
体易于与细胞其他组分分离,但需要注意的是蛋白复性的步骤。一般采用盐酸胍溶解包含体蛋白后,用稀释的办法进行复性,也可以利用凝胶过滤色谱进行复性(已有多种凝胶可以促进蛋白质的复性的报道)。以下以rhGM-CSF(重组人粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子)的下游纯化工艺为例: E.coli细胞,超声破碎,离心收集包含体,用7mol/L盐酸胍溶解包含体蛋白,作1:70稀释使蛋白复性,加硫酸铵至一定浓度后,上样于Phenyl-Sepharose 6 FF(high sub)色谱柱,活性组分再上Q
原创:Chromatography weixingui@263.net,推荐书籍:《蛋白纯化与实验鉴定指南》、《生物工程下游技术》、《酶工程》、《酶制剂工业》1)我现在手头有个融合蛋白,纯化的时候用助溶剂溶解后做了GST亲和层析,之后用蛋白酶切割后却发现目的蛋白没有活性。请问有哪些可能会出现这种原因?怎么解决?测过基因序列,没有问题。细胞破碎后,融合蛋白在沉淀里,我用助溶剂提取后,可以用GST做亲和层析,但效率只有50~60%左右。洗脱完融合蛋白不需要助溶剂,但这样的条件下切割完后目的蛋白会
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