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康朗生物
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文献和实验,Rb,TopoismeraseⅡ 等。 2、酶消化方法 常用 0.1% 胰蛋白酶和 0.4% 胃蛋白酶液。胰蛋白酶使用前预热至 37℃,切片也预热至 37℃,消化时间约为 5~30 分钟(胰酶的最终浓度可以根据使用者的要求进行调整,浓度范围可以从 0.05% 至 0.25% ); 胃蛋白酶消化37℃ 时间为 30 分钟。皂素(Saponin):一般使用浓度为2~10mg/ml的saponin 溶液,消化时间为室温孵育 30 分钟。 适用于被固定遮避的抗原,其中有:Collagen
至20分钟之间,颜色的稳定性最好。 3.干扰物质少。如干扰Lowry法的K+、Na+、Mg2+离子、Tris缓冲液、糖和蔗糖、甘油、巯基乙醇、EDTA等均不干扰此测定法。 此法的缺点是: 1.由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此Bradford法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差,在制作标准曲线时通常选用g—球蛋白为标准蛋白质,以减少这方面的偏差。 2. 仍有一些物质干扰此法的测定,主要的干扰物质有:去污剂、Triton X-100、十二
/ml 支链淀粉标准溶液。 3. 材料 供试谷物粉。 四、操作步骤 1 .选择直链、支链淀粉测定波长、参比波长。 直链淀粉:取 1mg/ml 直链淀粉标准液 1ml, 放入 50ml 容量瓶中,加蒸馏水 30ml, 以 0.1 mol/ L HCl 溶液调至 pH 3.5 左右,加入碘试剂 0.5ml, 并以蒸馏水定容。静置 20min ,以蒸馏水为空白,用双光束分光光度计进行可见光全波段扫描或用普通比色法绘出直链淀粉吸收曲线。 支链淀粉:取 1 mg/ml 支链淀粉标准液 1ml
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