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文献和实验,最后取 5μL 2000 倍稀释样本到 245μL 标准品&样本稀释液内,做 50 倍稀释,总共稀释 100000 倍; 每步稀释时,取液量不少于 3μL,稀释倍数不超过 100 倍。每步稀释都需混合均匀。 Q3:大小鼠采血容量? A3:根据实验方案所需采血量的要求,我们可以选择不同的采血方式。 鼠尾采血法: 取血量较少时,采用此方法。通常选择剪断尾巴进行采血。亦可不剪尾,用 7-8 号注射针头刺入尾静脉采血。 小鼠每次可取血 0.1mL,大鼠每次可取血 0.2~0.4mL,可多次反复采血
(或表面粗糙的物体)上,轻轻向后拉鼠尾,在小鼠向前挣脱时,用左手(熟练者也可用同一只手)拇指和食指抓住两耳和颈部皮肤,无名指、小指和手掌心夹住背部皮肤和尾部,并调整好动物在手中的姿势。这类捉拿方法多用于灌胃以及肌肉、腹腔和皮下注射等。如若进行心脏采血、解剖、外科手术等实验时,就必须要固定小鼠。使小鼠呈仰卧位(必要时先进行麻醉),用橡皮筋将小鼠固定在小鼠实验板上。如若不麻醉,则将小鼠放入固定架里,固定好固定架的封口。(小鼠抓取方法)2、大鼠的捉拿、固定 大鼠的捉拿有一些危险性,因大鼠受攻击时,会咬人抓
:与豚鼠心脏采血法类似。心脏穿刺部位在第3肋骨间隙,胸骨左缘3mm处,每次可取血20―25ml。 二、采尿 (一)代谢笼法 此法较常用,适用于大鼠和小鼠的尿液采集代谢笼是能将尿液和粪便分开而达到收集动物尿夜目的―-―种特殊装置。 (二)导尿法 此法常用于雄性兔、犬、动物轻度麻醉后,固定于手术台上,由尿道插入导管(顶端应涂抹液体石蜡),可以采到未污染的尿液。 (三)压迫膀胱法 此法适用于兔、犬等动物,将动物轻度麻醉后,实验者用手在动物下腹部加压
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