延河牌玻璃培养皿

快速掌握无菌操作

商品化试剂和培养基均经过严格的质量控制以保证其无菌，但它们在操作过程中可能被污染。请遵循以下指导原则进行无菌操作，避免污染。请始终使用适当的灭菌方法（如高压灭菌器、除菌过滤器）对实验室中配制的任何试剂、培养基或溶液进行灭菌。 无菌操作 请始终用 70% 乙醇擦拭双手和工作区。 将容器、培养瓶、培养板和培养皿放入细胞培养通风橱之前，先用 70% 乙醇擦拭其外部。 不要直接从试剂瓶或培养瓶中倾倒培养基和试剂。 使用无菌玻璃或一次性塑料移液管和移液器操作液体时，每只移液管只能使用一次，以避免

加速显微观察实验的 5 个实用方法

3.（上）光轴和视场周边区域的光强度是影响图像质量的一项因素。当我们观察到较大视场时，阴影会更加严重。（左下）以较大视场进行拼接意味着需要的图像采集时间较短，但是图像接缝可能会很明显。在可以接受较低图像质量的情况下，这一策略可以加快实验速度。（右下）如果需要无缝拼接图像，则需要使用较小的视场。   培养皿类型：尽管玻璃底的培养皿或多孔板对于图像质量而言最佳，但是聚苯乙烯多孔板不但可以节省成本还具有更好的细胞粘附性。以下为选择非玻璃底培养容器的技巧： 培养容器类型会影响图像质量和工作距离（WD）。使用较厚

短时间获得更长活细胞成像的 4 个技巧

稳定性，还要避免气流从空调直接吹向显微镜。   3.通过精确设置焦点和校正环提高图像质量 解决诸如 Z 漂移之类时间性波动的另一种方法是开始活细胞实验前尽可能精确设置焦点和环校正。 研究人员往往只会细心调整焦点，而忽略了校正环。然而，校正环能够显著改善图像的质量，在进行深层组织观察或使用高数值孔径物镜时尤其如此。 校正环的理想位置取决于诸如样品折射率、观察平面深度和盖玻片厚度等许多因素。即便大多数盖玻片和玻璃底培养皿的厚度只有 170 μm（＃1.5），其仍然会导致波动，并且更重要的是，不能以塑料