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Kilby Gravity 微重力培养系统

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  • kilby
  • K-TDMG2403A
  • 2026年01月09日
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    北京基尔比生物科技公司研制生产的Kilby Gravity微重力培养系统通过精密的旋转装置,在地面创造出低流体静压、低机械应力的微环境,使细胞/动物/植物/微生物等得以在更接近体内的三维状态下生长和分化,为疾病研究、药物筛选和再生医学提供了强大的工具
    详情介绍

     

    (一)微重力培养技术的核心原理

     

    北京基尔比生物科技公司研制生产的【Kilby Gravity微重力培养系统】通过在地面实验室中模拟太空微重力环境,来促进细胞在三维空间中生长,从而更真实地模拟体内的生理条件。‌

     

    该技术主要依赖‌旋转运动‌(如Kilby Gravity回转器或旋转壁容器生物反应器)来实现。细胞被放置在充满培养液的培养容器中,并以特定速度水平旋转。这种旋转使细胞持续处于重力方向动态变化的环境中,由于细胞无法对快速变化的重力信号作出响应,从而产生类似微重力(通常模拟为10⁻³g级别)的生物学效应。

     

     

    (二)仪器设备的性能优势:

     

    ‌1.低剪切力环境‌:旋转产生的流体剪切力极低,能有效保护脆弱细胞(如神经干细胞、肝细胞)的完整性,避免传统培养中因气泡或湍流造成的机械损伤。‌

     

    ‌2.促进三维聚集‌:在微重力效应下,细胞间更容易自发聚集,形成均匀的三维球状聚集体或类器官,这更接近体内组织的自然结构。‌

     

    ‌3.优化物质传输‌:结合主动气体交换和旋转带来的流体流动,能高效输送营养物质并清除代谢废物,避免细胞团块内部因营养不足或废物积累导致的坏死,支持长期培养。

     

    4.可定制化:适配动物,植物,微生物地面的微超重力模拟‌。

     

    5.兼容二氧化碳培养箱/生化培养箱,适配培养瓶,培养皿,离心管,器官芯片等

     


    北京基尔比生物科技公司研制生产的【Kilby Gravity微重力培养系统】通过精密的旋转装置,在地面创造出低流体静压、低机械应力的微环境,使细胞/动物/植物/微生物等得以在更接近体内的三维状态下生长和分化,为疾病研究、药物筛选和再生医学提供了强大的工具。

     

     

    (三)关键技术参数:

    模拟重力环境范围 旋转提供微重力环境模拟(10-3G),同时提供超重力环境的模拟(2G,2.5G或3G)、月球重力0.17G、火星重力0.38G
    模拟环境下的重力监测能力 可提供模拟环境下的重力监测,X 轴、Y 轴、Z 轴三维空间重力监测并显示实时重力数值,精确度±0.001G,让研究人员实时采集了解模拟环境重力的精确变化
    模拟微重力环境旋转模式及速度 模拟微重力环境的4种旋转模式的速度分别为A:4rpm, B: 3rpm, C: 2rpm, D: 1rpm。
    模拟超重力环境旋转模式及速度 模拟超重力环境的3种旋转模式分别为2.0G, 2.5G , 3G 。
    细胞培养装置搭载架类型 T25透气型培养瓶不少于12个,其他规格的培养装置如培养皿、器官芯片、球体生物反应器等可以按照需求定制搭载架。
    仪器操作及使用方式 带有摄像头可监测设备运行状态,具有快速启动(手动控制)或程序预约功能,仪器通过触屏操控,简单方便;该仪器可以直接放进培养箱,方便细胞的培养。

     

    (四)部分用户案例介绍

    上海交通大学生科院,中山大学医学研究中心,中科院动物所,哈工大空间医学中心,浙江大学基础医学院等用户采购北京基尔比生物科技公司研制生产的【Kilby Gravity微重力培养系统】——现场安装图片


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    图标文献和实验
    该产品被引用文献
    at global downregulation of HLA-I may lead to hyporeactivity of NK cells in certain situations.
    The data presented in this study suggest that, using the protocol described here, most genome editing events
    are specific, with a low frequency of unintended integrations or incomplete editing. Nevertheless, the potential
    for such events must be carefully considered when evaluating edited cell populations. Genotyping PCR, flow
    cytometry, and RT-qPCR analyses in this study support the bi-allelic integration of iCASP9. However, these
    methods cannot fully exclude the possibility that one allele may have undergone a complex rearrangement—
    such as a disruptive event leading to B2M loss without proper iCASP9 integration, resulting in a hemizygous
    cell line. Such aberrations may be difficult to detect without the use of more comprehensive genomic analyses20.
    Hence, whole genome sequencing may be a useful quality control assay for gene editing under GMP conditions.
    Taken together, we have established a GMP-friendly and highly efficient KI platform which, due to its simple
    handling steps and flexibility, provides an attractive option for universal editing of iPSCs, applicable to all iPSC
    fields including cell therapy. The cell lines created in this study pose only one example of many useful edits of
    broad impact that could help to improve iPSC-based cell therapies in the near future.
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