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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
-20℃
- 英文名:
L-Valine-¹³C₅
- 库存:
99
- 供应商:
上海源叶生物科技有限公司
- CAS号:
55443-52-2
- 规格:
1mg
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文献和实验过久没有必要;反之,在高温时间应尽量缩短,以保持Taq DNA聚合酶的活力,加入Taq DNA聚合酶后最高变性温度不宜超过95℃。 2.引物退火温度退火温度决定PCR特异性与产量;温度高特异性强,但过高则引物不能与模板牢固结合,DNA扩增效率下降;温度低产量高,但过低可造成引物与模板错配,非特异性产物增加。一般先由37℃反应条件开始,设置一系列对照反应,以确定某一特定反应的最适退火温度。也可根据引物的(G+C)%含量进行推测,把握试验的起始点,一般试验中退火温度Ta(annealing
又是用什么柱子呢,是反相吗,我觉得你得先说清楚这样才好分析. 95) chromatography兄,很感谢你的帮助,我这里没有抽滤漏斗,请问那里可以买?贵吗? 我明天用你说得办法处理几次,看看有没有办法解决,如果没有抽滤漏斗,是不是有什莫替代品那? 亲和我使用的是sephrose cl 6B,配基是酶的底物,我的酶是有4个亚基的聚合体,共同存在时才有活性,那两条杂蛋白带在SDS-PAGE中位于主带的下面,洗脱采用底物类似物等pH浓度梯度洗脱,奇怪的是高浓度洗脱纯度较高,一般可以去掉其中的一条
。目的蛋白占44%,余下大部分为二聚体和多聚体。但在做反相HPLC时,只出现两个峰,第一主峰占90%(目的蛋白的位置),出峰时间为13分钟,第二主峰占10%,出峰时间为3分钟。请问在做HPLC时,二聚体和多聚体是否发生改变?用此方法测定含有二聚体和多聚体存在的目的蛋白纯度,是否不妥?我用柱子是C4柱,5υm,300埃。流动相B用0.05%三氟乙酸的乙腈,流动相A用0.05%三氟乙酸的纯水。 我觉得蛋白的聚合应该和存在的环境有很大的关系,但是即使如此,那聚合体在反相上能有这么大的差别
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