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转基因植物 Bar 基因核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)

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  • 2025年09月12日
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    • 英文名

      Genetically Modified Plants Bar Gene Detection Kit

    • 保质期

      1年

    • 供应商

      上海晅科生物科技有限公司

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50T

    转基因植物 Bar 基因核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
    英文名称:Genetically Modified Plants Bar Gene Detection Kit
    Bar 基因(Bialaphos resistance gene),来源于土壤吸水链霉菌,编码膦丝菌素乙酰转移酶(PAT),该酶具有对除草剂草丁膦的耐受性,而被应用于水稻、大豆、玉米、小麦等作物改造中,获得大量草丁膦抗性作物。 本试剂盒适用于检测转基因植物的 Bar 基因,用于筛查待检测植物中是否含有 Bar 成分。

    产品细节图片1

    本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对 Bar 基因特异性引物,结合一条特异性探针, 用荧光 PCR 技术对 Bar 基因的 DNA 进行体外扩增检测,从而达到快速检测之目的。

    转基因植物 Bar 基因核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)试剂组成

    包装规格 50T/盒
    Bar 反应液 500μL×2 管
    酶液 50μL×1 管
    Bar 阳性质控品 50μL ×1 管
    阴性质控品 250μL ×1 管
    说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用

    储存条件及有效期:-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

    适用仪器:ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

    标本采集:称取 200g 样品。

    保存和运输:采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置-70℃以下保存,冻融不超过 3 次。

    产品细节图片2

    使用方法:
    1.    样品处理(样本处理区) 1.1    样本前处理 固体样本:用粉碎机或冷冻研磨仪将样品研磨至细粉状。 1.2    核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取试剂(离心柱法)进行核酸提取,请按照试剂说明书进行    操作。 2.    试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表: 试剂    Bar 反应液    酶液 用量    19μL    1μL 将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。 3.    加样(样本处理区) 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。 4.    PCR 扩增(核酸扩增区) 4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内; 4.2    设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL; 荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。   4.3    推荐循环参数设置: 步骤    循环数    温度    时间    收集荧光信号 1    1 cycle    95℃    2min    否 2    40 cycles    95℃    15sec    否         60℃    30sec    是 5.    结果分析判定 5.1    结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例) 反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。 5.2    结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果 Ct 值>35 或无 Ct 值。 5.3    质控标准 阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。 6.    检测方法的局限性 1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关; 2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果; 3.    阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果; 4.    病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果; 5.    不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果; 6.    试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果; 7.    本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

    注意事项
    1.    所有操作严格按照说明书进行;
    2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
    3.    反应液应避光保存;
    4.    反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
    5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
    6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
    7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
    8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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