普氏-立克次体（RP）核酸检测试剂盒（探针法荧光PCR）

普氏-立克次体（RP）核酸检测试剂盒（探针法荧光PCR）
英文名称：Rickettsia prowazeki Detection Kit
斑疹伤寒是由普氏-立克次体（R .prowazekii）或莫氏-立克次体（R.mooseri）引起的急性感染性疾病，普氏-立克次体引起的感染称为流行性斑疹伤寒，而莫氏-立克次体引起的称为地方性斑疹伤寒。流行性斑疹伤寒为虱传播，临床症状较重，主要表现为高热、头痛、皮疹，甚至神经性症状显著，可出现听觉障碍、神志迷糊直至死亡。目前, 普氏-立克次体的临床诊断主要依靠血清学检测,但是由于特异性抗体出现较晚,故无法在早期对该病进行诊断。培养分离方法操作复杂和耗时，而且成功率不高。普通 PCR 法显得不敏感，加上 PCR 法的其它缺陷,使得普氏-立克次体的PCR 检测难以在临床上推广使用。实时荧光定量 PCR 是一种快速检测病原体的高特异和高敏感技术[2]。 本试剂盒利用实时荧光定量PCR 原理，定性检测普氏-立克次体，对普氏-立克次体的诊断及疗效评估有重要指导意义。

本试剂盒采用TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术，针对普氏-立克次体基因高度保守区设计一对特异性引物和探针，利用相应仪器对 PCR 过程进行实时监测，实现检测结果的定性分析，用于对可疑感染者的病原学检测。

普氏-立克次体（RP）核酸检测试剂盒（探针法荧光PCR）试剂组成：

包装规格	50T/盒
RP 反应液	500μL×2 管
酶液	50μL×1 管
RP 阳性质控品	50μL ×1 管
阴性质控品	250μL ×1 管

说明：不同批号的试剂盒组分不可交互使用

储存条件及有效期：-20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次，有效期 12 个月。

适用仪器：ABI 、安捷伦MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量PCR 检测仪。

标本采集：适用于人体的血液、体液和棉拭子等多种样本。

保存和运输：上述标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-70℃，但不能超过 6 个月，标本运送应采用 2~8℃冰袋运输， 严禁反复冻融。

使用方法：
1.    样品处理（样本处理区） 1.1    样本前处理 血液、体液和棉拭子样本取 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中 1.2    核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取或纯化试剂（磁珠法或离心柱法）进行核酸提取，请按照试剂说明书进行操作。 2.    试剂配制（试剂准备区） 根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为N（N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；反应管数每满 10 份，多配制 1 份），每测试反应体系配制如下表： 试剂    RP 反应液    酶液 用量（样本数为N）    20μL    1μL 将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中，21μL/管。 3.    加样（样本处理区） 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀，短暂离心。   4.    PCR 扩增（核酸扩增区） 4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内； 4.2    设置好通道、样品信息，反应体系设置为 25μL； 荧光通道选择： 检测通道（Reporter Dye）FAM， 淬灭通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光，选择None 即可。 4.3    推荐循环参数设置： 步骤    循环数    温度    时间    收集荧光信号 1    1 cycle    95℃    10min    否 2    40 cycles    94℃    15sec    否         55℃    30sec    是 5.    结果分析判定 5.1    结果分析条件设定 设置Baseline 和Threshold：一般直接按机器自动分析的结果分析，当曲线出现整体倾斜时，根据分析后图像调节Baseline 的start 值（一般可在 3~15 范围内调节）、stop 值（一般可在 5~20 范围内调节），以及 Threshold的Value 值（上下拖动阈值线至高于阴性对照），重新分析结果。 5.2    结果判断 阳性：检测通道 Ct 值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线； 可疑：检测通道 3538 或无 Ct 值。 6.    质控标准 阴性质控品：Ct>38 或无 Ct 值显示； 阳性质控品：扩增曲线有明显指数生长期，且 Ct 值≤32； 以上条件应同时满足，否则实验视为无效。 7.    检测方法的局限性 1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关； 2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果； 3.    阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果； 4.    病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果； 5.    不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果； 6.    试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果； 7.    本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

注意事项
1.    所有操作严格按照说明书进行；
2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化，完全混匀并短暂离心；
3.    反应液应避光保存；
4.    反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；
5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；
6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；
7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；
8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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