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恙虫病-东方体(OT)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)

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  • 2026年02月05日
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      166

    • 英文名

      Orientia tsutsugamushi Detection Kit

    • 保质期

      1年

    • 供应商

      上海晅科生物科技有限公司

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50T

    恙虫病-东方体(OT)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
    英文名称:Orientia tsutsugamushi Detection Kit

    恙虫病(Scrub typhus)是由恙虫病-东方体(Orientia tsutsugamushi)引起的,临床表现为发热、头痛、斑丘疹、淋巴结肿大等,眼中是可致命的自然源性虫媒传染病。恙虫病流行地域分布甚广[1],不仅对各国的公共卫生构成严重威胁,还是威胁各国旅游者健康的重要危险因素[2]。目前, 恙虫病-东方体的临床诊断主要依靠血清学检测,但是由于特异性抗体出现较晚,故无法在早期对该病进行诊断。培养分离方法操作复杂和耗时,而且成功    率不高。普通 PCR 法显得不敏感,加上 PCR 法的其它缺陷,使得恙虫病-东方体的 PCR 检测难以在临床上推广使用。实时荧光定量 PCR 是一种快速检测病原体的高特异和高敏感技术。 本试剂盒利用实时荧光定量 PCR 原理,定性检测恙虫病-东方体,对恙虫病诊断及疗效评估有重要指导意义。

    产品细节图片1

    本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,针对恙虫病-东方体 GroEL 基因高度保守区设计一对特异性引物和探针,利用相应仪器对 PCR 过程进行实时监测,实现检测结果的定性分析,用于对可疑感染者的病原学检测。

    恙虫病-东方体(OT)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)试剂组成

    包装规格 50T/盒
    OT 反应液 500μL×2 管
    酶液 50μL×1 管
    OT 阳性质控品 50μL ×1 管
    阴性质控品 250μL ×1 管
    说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用

    储存条件及有效期:-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

    适用仪器:ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

    标本采集:适用于动物和人体的血液、体液和组织等多种样本。

    保存和运输:上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输, 严禁反复冻融。

    产品细节图片2

    使用方法:
    1.    样品处理(样本处理区) 1.1    样本前处理 组织样品:每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;液体样本直接取 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中 1.2    核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取试剂(离心柱法)进行核酸提取,请按照试剂说明书进    行操作。 2.    试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表: 试剂    OT 反应液    酶液 用量(样本数为 N)    19μL    1μL 将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。 3.    加样(样本处理区) 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。   4.    PCR 扩增(核酸扩增区) 4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内; 4.2    设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;荧光通道选择: 检测通道(ReporterDye)FAM,淬灭通道(QuencherDye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光, 选择 None 即可。 4.3    推荐循环参数设置: 步骤    循环数    温度    时间    收集荧光信号 1    1 cycle    95℃    2min    否 2    45 cycles    95℃    15sec    否         60℃    30sec    是 5.    结果分析判定 5.1    结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例) 反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。 5.2    结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。 5.3    质控标准 阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。 6.    检测方法的局限性 1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关; 2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果; 3.    阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果; 4.    病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果; 5.    不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果; 6.    试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果; 7.    本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

    注意事项
    1.    所有操作严格按照说明书进行;
    2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
    3.    反应液应避光保存;
    4.    反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
    5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
    6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
    7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
    8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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