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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
148
- 英文名:
Diagnostic Kit for Listeria monocytogenes DNA
- 保质期:
1年
- 供应商:
上海晅科生物科技有限公司
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
50T
英文名称:Diagnostic Kit for Listeria monocytogenes DNA
本试剂盒适用于检测水样粪便,疑似污染的水、食物等样本中的单增李斯特菌,用于单增李斯特菌感染的辅助诊断,其检测结果仅供参考。

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对单增李斯特菌特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对单增李斯特菌的核酸进行体外扩增检测,用于对可疑感染病料的病原学检测。
单增李斯特菌(LM)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)试剂组成:
| 包装规格 | 50T/盒 |
| LM 反应液 | 500μL×2 管 |
| 酶液 | 50μL×1 管 |
| LM 阳性质控品 | 50μL ×1 管 |
| 阴性质控品 | 250μL ×1 管 |
储存条件及有效期:-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
适用仪器:ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
标本采集:水样便取 0.5~1mL;疑似污染的食物取 1g
保存和运输:采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置-70℃以下保存,冻融不超过 3 次。

使用方法:
1. 样品处理(样本处理区) 1.1 样本前处理 水样便 13000rpm 离心 2min,去尽上清;疑似污染的食物用手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;疑似污染的水直接取 100μL 1.2 核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取试剂(离心柱法)进行核酸提取,请按照试剂 说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表: 试剂 LM 反应液 酶液 用量(样本数为 N) 19μL 1μL 将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。
3. 加样(样本处理区) 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
4. PCR 扩增(核酸扩增区) 4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内; 4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL; 荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM,淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。 4.3 推荐循环参数设置: 步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号 1 1 cycle 95℃ 2min 否 2 45cycles 95℃ 15sec 否 60℃ 30sec 是
5. 结果分析判定 5.1 结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例) 反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的Start 值、End 值以及 Threshold 值(用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。 5.2 结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。 5.3 质控标准 阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。 6. 检测方法的局限性 1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关; 2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果; 3. 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果; 4. 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果; 5. 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果; 6. 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果; 7. 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
注意事项
1. 所有操作严格按照说明书进行;
2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
3. 反应液应避光保存;
4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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文献和实验序列的分析,所需要的只是在常规PCR 基础上增加一个饱和染料。所以,相比传统的SNP 或突变分析法和定量探针法,简化了操作时间和步骤,大大降低了使用成本,并且实现了闭管操作,使其用于临床常规化检测成为可能。高分辨率熔解曲线分析可以鉴别出PCR 产物中杂合的单碱基突变 这种方法比起普通的技术来说有更好的灵敏性和特异性。采用这种方法进行的突变的检测不依赖于突变在片段中所在的位置。当片段的大小在400 bp 或者更小时,灵敏性最高。除了能鉴定出未知的杂合突变,高分辨率熔解曲线还可以被用来鉴定特定位点的突变
光检测仪器透过PCR管壁能直接检测到荧光信号的波长和长度变化。 主要有以下优点: 1、探针特异性强,假阳性率低; 2、操作快速,不需要PCR后处理; 3、定量范围宽,HBV 0.4fg-4000fg/ml(102-106 Dane′s particle/ml); 4、闭管操作,PCR产物污染少; 5、灵敏度高。 主要方法有: 1、荧光探针法:进行荧光PCR检测时,要求荧光探针必须完全与靶基因互补,长度以20-30个碱基为宜,必要时3′端磷酸化封闭,以防在扩增时作为引物延伸。该方法利用Taq
,平均批间变异系数为11.4%;液相芯片与ELISA法检测结果的相关系数R2为0.88~0.99。 国外多家公司已推出了商品化的细胞因子液相芯片检测试剂盒,比如R&D 公司的Flurokine MAP系列、Linco Research公司的LINCOplex 试剂盒、BioSource公司的Antibody Bead Kit、Bio Rad公司的Bio Plex系列等,可用于来自人、小鼠、大鼠的样品,既有一次检测单种细胞因子的试剂盒,也有预先混合多种细胞因子抗体交联微球而一次检测多个指标
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