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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
125
- 英文名:
Hepatopancreatic Parvovirus Detection Kit
- 保质期:
1年
- 供应商:
上海晅科生物科技有限公司
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
50T
英文名称:Hepatopancreatic Parvovirus Detection Kit
对虾肝胰腺细小病毒(Hepatopancreatic parvovirus, HPV)为单链 DNA 病毒,隶属于细小病毒科、细小病毒属。1984 年从新加坡地区野生的墨吉明对虾和印度明对虾中首先发现了 HPV。感染该病毒使对虾厌食、行动不活泼、生长缓慢,鳃和体表有附着的共栖生物,偶尔发现腹部肌肉变白,严重时可导致幼虾死亡,死亡率高达 100%。造成较大的经济损失。因此,建立一种快速、特异、使用方便的检测技术对 HPV 的防治非常重要。 本试剂盒适用于检测对虾活体及其粪便、冰鲜虾产品和敏感宿主等样本中的肝胰腺细小病毒,用于肝胰腺 细小病毒感染的辅助诊断。

本试剂盒采对肝胰腺细小病毒基因设计特异性引物和探针,用荧光 PCR 技术对肝胰腺细小病毒的核酸进行体外扩增检测,用于对可疑感染病料的病原学检测。
对虾肝胰腺细小病毒(HPV)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)试剂组成:
| 包装规格 | 25T/盒 | 50T/盒 |
| HPV 反应液 | 500μL×1 管 | 500μL×2 管 |
| 酶液 | 25μL×1 管 | 50μL×1 管 |
| HPV 阳性质控品 | 50μL ×1 管 | 50μL ×1 管 |
| 阴性质控品 | 250μL ×1 管 | 250μL ×1 管 |
储存条件及有效期:-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
适用仪器:ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
标本采集:幼虾采集整条对虾作为样品;成虾采集上皮、肝胰腺、肠或鳃作为样品;非生物样品,取 0.5g。
保存和运输:采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置-70℃以下保存,冻融不超过 3 次。

使用方法:
1. 样品处理(样本处理区) 1.1 样本前处理 取0.5g 样品于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中 1.2 核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取, 请按照试剂说明书进行操作。 2. 试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表: 试剂 HPV 反应液 酶液 用量(样本数为 N) 19μL 1μL 将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。 3. 加样(样本处理区) 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。 4. PCR 扩增(核酸扩增区) 4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内; 4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL; 荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM,淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。 4.3 推荐循环参数设置: 步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号 1 1 cycle 95℃ 2min 否 2 45cycles 95℃ 15sec 否 60℃ 30sec 是 5. 结果分析判定 5.1 结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例) 反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。 5.2 结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。 5.3 质控标准 阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。 6. 检测方法的局限性 1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关; 2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果; 3. 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果; 4. 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果; 5. 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果; 6. 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果; 7. 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
注意事项
1. 所有操作严格按照说明书进行;
2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
3. 反应液应避光保存;
4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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大学生命科学学院教授,博士生导师,分子诊断教育部工程研究中心负责人。一直致力于重大疾病的分子诊断技术研究及其在肿瘤、传染病、遗传性疾病等领域诊断试剂的研制和开发,是我国实时PCR技术发展的主要推动者。提出核酸置换杂交原理,发明“置换探针”,在实时PCR突变和基因分型领域取得国内外公认成果。主要授课内容介绍:实时PCR基础: 实时PCR的提出、原理和应用 荧光PCR的各类探针与应用比较 荧光PCR体系的建立与优化:组分分析与添加剂 多重实时PCR体系建立 实时PCR定量检测的假病毒内标和外标 实时
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