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上海隐智科学仪器有限公司
二手AKTA avant 25蛋白纯化系统介绍
AKTA avant 25是Cytiva(原GE Healthcare生命科学事业部)推出的中型层析系统,专为蛋白质、多肽和核酸等生物大分子的纯化工艺开发及中小规模制备而设计。该系统以其出色的可靠性、灵活性和重复性,成为生物制药和科研机构中备受青睐的纯化平台。
系统组成与配置特点
模块化结构设计
系统采用高度模块化的架构,标准配置包含:双泵梯度混合系统(流速范围0.01-25 mL/min)、自动进样器、紫外检测器(最多可同时监测3个波长)、电导和pH监测模块、组分收集器以及馏分收集器。系统压力上限可达2.5 MPa,满足大多数层析填料的运行要求。
检测与监控能力
紫外检测器支持280 nm、254 nm等多波长实时监测,可选配多波长扫描功能。集成式电导和pH传感器提供精确的缓冲液组成监控,所有流路接触部件均采用生物兼容性材料,确保样品完整性。
技术性能优势
1. 精确的梯度控制
双泵系统提供优异的梯度精度(CV<1%),系统延迟体积小于1.0 mL,确保方法转移时的重现性。支持线性、阶梯和自定义梯度模式,满足各种纯化策略的需求。
2. 智能化软件平台
UNICORN控制软件提供直观的用户界面和完整的纯化流程管理。软件包含方法开发、柱性能评价、系统验证等模块,支持从筛选到制备的全流程优化。
3. 广泛的应用兼容性
系统支持所有常见层析技术:亲和层析(如His标签、Protein A纯化)、离子交换、疏水相互作用、分子筛及复合模式层析。可适配1 mL-100 mL规格层析柱,覆盖从微量筛选到克级制备的多种规模。
应用领域
1. 科研机构应用
特别适合大学、研究所的蛋白质组学研究、重组蛋白表达纯化、酶制剂制备等科研工作。系统的稳定性和重复性为科学研究提供可靠保障。
2. 生物技术企业
适用于抗体片段、细胞因子、疫苗抗原等生物制剂的工艺开发和中试生产。系统可直接放大到生产规模,加速产品开发进程。
3. 诊断试剂开发
适合酶标记物、抗体偶联物等诊断试剂原料的制备,满足质量控制要求。
二手设备评估要点
1. 使用状态核查
需重点检查:累计运行时间、泵头循环次数、流路使用情况、紫外灯使用小时数(通常寿命约2000小时)。建议索取完整的维护记录和性能验证报告。
2. 关键部件状态
评估泵密封圈、阀门、传感器等易损件的磨损程度。检查流通池是否有划痕或污染,确认所有传感器的校准状态。
3. 性能验证测试
建议进行以下测试:流量精度(应优于±2%)、梯度准确性(偏差小于±1%)、紫外基线稳定性(噪声<0.5 mAU)。同时验证系统的保留时间重复性和峰面积重现性。
4. 配套完整性
确认包含原装UNICORN软件授权、所有必要的方法包、备件套件及完整的技术文档。检查系统是否包含所有必需的连接管路和适配器。
价值优势与使用建议
选择二手AKTA avant 25系统具有显著的经济性,价格通常仅为新机的20%-40%。该系统以其坚固耐用的设计著称,properly维护的设备即使使用多年仍能保持优异性能。
Cytiva提供完善的售后服务支持,包括设备认证、维修保养和技术培训。全球化的零部件供应体系确保设备的长期稳定运行。
对于预算有限但需要高质量蛋白纯化平台的用户,二手AKTA avant 25是极具性价比的选择。建议通过正规渠道采购,并要求提供详细设备检测报告。购买后建议进行全面的预防性维护,更换所有易损件,以确保最佳运行状态。
该系统成熟的技术平台和广泛的应用基础,使其成为中小型生物实验室和初创企业的理想纯化解决方案,能够满足大多数蛋白纯化需求的同时,显著降低设备投入成本。
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文献和实验CDC6和ORC的复合体结构。Stillman实验室正在准备一篇文章要投到nature上去。大家等着看把。 (八)”液体DEAE“ 绕了这么大一圈,现在再回到第一个模块的实验来。前面提到Dr.Burgess要我们 试Gudn HCl溶解sigma32之后的重折叠,结果很糟糕。我们接着试了用sarkosyl做 变性剂的蛋白重折叠。步骤和前一个类似,只是这一次是突然稀释至25倍体积。效果好了很多,至少没有浑浊现象了。接着我们用Poros HS 50,一种阳离子
啊什么可以看得到。 2。TFE能使蛋白变成a-helix。及这个蛋白本来不是a-helix的,但是由于加入TFE的作用,使之变成a-helix。 具体的原理我就没仔细读了,不过这两方都有一定的文献证明,现在还不知道谁对! ^_^ 45)我是需要在兔肝中纯化一种酶,而且我是刚刚接触蛋白纯化我有几个问题想请教: 1 : 我的目的蛋白在强阴离子柱上结合(buffer : 25 mM 磷酸盐 PH 7.4),但是似乎结合力很弱(因为上样时就有少量蛋白flowthrough,而且洗脱峰在电导值刚开始升高时
道谁对! ^_^ 45) 我是需要在兔肝中纯化一种酶,而且我是刚刚接触蛋白纯化我有几个问题想请教: 1 : 我的目的蛋白在强阴离子柱上结合(buffer : 25 mM 磷酸盐 PH 7.4),但是似乎结合力很弱(因为上样时就有少量蛋白flowthrough,而且洗脱峰在电导值刚开始升高时就开始出现了),我换用了20mM Tris PH 8.2 buffer 之后,蛋白的结合力好像还是很弱,洗脱峰没多大改变.请问我用 PH 8.5 Tris buffer 会改善我的问题么? 2: 由于目的蛋白丰度低易失活
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