Fmoc-L-Cys(Acm)-Trt TG,Fmoc-L-
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 英文名：
TetramethylbisphenolA
- 库存：
999
- 供应商：
智溯科ZSK
- CAS号：
5613-46-7
- 规格：
10mg///100mg///200mg
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文献和实验、分离与纯化通常采用高效液相色谱、亲和层析、毛细管电泳等。 HPLC分析和纯化 分析HPLC使用柱子和泵系统，可以经受传递高压，这样可以用极细的微粒（3-10μ m）做填料。由此多肽要在几分钟内高度被分析。 HPLC分两类：离子交换和反相。 离子交换HPLC依靠多肽和固相间的直接电荷相互作用。柱子在一定PH范围带有特定电荷衍变成一种离子体，而多肽或多肽混合物，由其氨基酸组成表现出相反电荷。 分离是一种电荷相互作用，通过可变PH， 离子强度， 或两者洗脱出多肽，通常， 先用低离子强度的溶液，以后
。 5. 合成环肽的其它方法 下面介绍几种比较特殊的环肽合成方法： Meuterman等人巧妙地将光敏感辅助剂融合在环肽合成过程中，这种与常规合成方法不同的策略，不仅丰富了环肽合成方法学的内容，也为其他合成工作者提供了想象空间。直链五肽H-Ala-Phe-Leu -Pro-Ala-OH H-Ala-Phe-Leu-Pro-D-Ala-OH和H- Phe- Leu -Pro-Ala -Ala-OH在常规条件下，溶于DMF，使成为10-3～10-4M溶液，加入3倍量Bop为缩合剂，5倍量DIEA作为碱和催化
。我的蛋白是2KD，在做非还原电泳时，发现除了目的蛋白外，有二聚体和多聚体存在。目的蛋白占44%，余下大部分为二聚体和多聚体。但在做反相HPLC时，只出现两个峰，第一主峰占90%（目的蛋白的位置），出峰时间为13分钟，第二主峰占10%，出峰时间为3分钟。请问在做HPLC时，二聚体和多聚体是否发生改变？用此方法测定含有二聚体和多聚体存在的目的蛋白纯度，是否不妥？我用柱子是C4柱，5υm,300埃。流动相B用0.05%三氟乙酸的乙腈，流动相A用0.05%三氟乙酸的纯水。 我觉得蛋白的聚合应该和存在
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