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氨基聚乙二醇乙酸MW20000,NH2-PEG-AA 氨基

聚乙二醇乙酸MW20000,NH2-PEG-AA nan 科研现货速达 ≥98% HPLC
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  • SGS-HV-9786
  • 2025年07月14日
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      氨基聚乙二醇乙酸MW20000,NH2-PEG-AA

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      999

    • 供应商

      智溯科ZSK

    • CAS号

      N/A

    • 规格

      100mg///1g

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    • 多肽的固相合成、切割及纯化

      键延长到设计长度。5、切割,将合成的肽由固相载体上切割下来并脱去侧链保护。6、纯化,切割后的肽进行纯化、鉴定。下面以合成的huBPP为例,简介在Pioneer上的合成切割及纯化过程: 一、huBPP的合成 (一)仪器及试剂 Pioneer肽合成仪、氩气,纯度99.99% 、二甲基甲酰胺(DMF)、哌啶、HATU 、二异丙基乙胺、 甲醇、TFA(三氟乙酸)、合成需要的侧键保护氨基酸、树脂 Fmoc-PAL-PEG-PS 注:Fmoc-芴甲氧羰基(Fluoreny lmethyl

    • 蛋白纯化实验经验总结

      体和多聚体是否发生改变?用此方法测定含有二聚体和多聚体存在的目的蛋白纯度,是否不妥?我用柱子是C4柱,5υm,300埃。流动相B用0.05%三氟乙酸的乙腈,流动相A用0.05%三氟乙酸的纯水。 我觉得蛋白的聚合应该和存在的环境有很大的关系,但是即使如此,那聚合体在反相上能有这么大的差别吗,你可以用HPLC的凝胶过滤柱子在走一遍试试,或者你把第一个峰和后面的峰都跑电泳看是不是都是蛋白,如果第一个峰也是蛋白,那说明你推断是对的,如果不是,那就是没有分开。 我觉得测定聚合体还是用高效凝胶过滤色谱更好点

    • 【资源】蛋白纯化经验指南()

      。我的蛋白是2KD,在做非还原电泳时,发现除了目的蛋白外,有二聚体和多聚体存在。目的蛋白占44%,余下大部分为二聚体和多聚体。但在做反相HPLC时,只出现两个峰,第一主峰占90%(目的蛋白的位置),出峰时间为13分钟,第二主峰占10%,出峰时间为3分钟。请问在做HPLC时,二聚体和多聚体是否发生改变?用此方法测定含有二聚体和多聚体存在的目的蛋白纯度,是否不妥?我用柱子是C4柱,5υm,300埃。流动相B用0.05%三氟乙酸的乙腈,流动相A用0.05%三氟乙酸的纯水。 我觉得蛋白的聚合应该和存在

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