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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
9
- 英文名:
Theta Protein Refolding Kit
- 保质期:
12个月
- 供应商:
玺拓基因
- 保存条件:
4度
- 规格:
10 runs
Theta Protein Refolding Kit
组分
|
Buffer 1 |
11 mL |
Buffer 10 |
11 mL |
|
Buffer 2 |
11 Ml |
Buffer 11 |
11 mL |
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Buffer 3 |
11 mL |
Buffer 12 |
11 mL |
|
Buffer 4 |
11 mL |
Buffer 13 |
11 mL |
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Buffer 5 |
11 mL |
Buffer 14 |
11 mL |
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Buffer 6 |
11 mL |
Buffer 15 |
11 mL |
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Buffer 7 |
11 mL |
DTT |
1 mL |
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Buffer 8 |
11 mL |
Glutathione, reduced |
1 mL |
|
Buffer 9 |
11 mL |
Glutathione, oxidized |
1 mL |
1. 产品概述
· 用途:用于从大肠杆菌表达的包涵体中复性重组蛋白,通过筛选15种不同缓冲液条件,快速确定最佳复性参数。
· 优势:采用部分因子实验设计(fractional factorial matrix),简化条件优化流程,节省时间和资源。
· 适用对象:需从包涵体回收活性蛋白的研究人员,适用于实验室规模到中试生产。
2. 原理
· 蛋白质复性:包涵体中蛋白质因折叠中间体聚集而失活,复性需克服聚集并促进正确折叠。
· 关键影响因素:
o 离子强度、pH、温度、氧化还原状态、去垢剂(如Triton X-100)、辅助因子(如精氨酸、蔗糖)及分子伴侣(如谷胱甘肽)。
o 不同缓冲液组合通过调整上述参数,抑制非特异性聚集并促进折叠途径。
· 实验设计:15种缓冲液覆盖13个关键变量(如pH、盐浓度、去垢剂、氧化还原系统),通过统计学分析筛选主要影响因素。
3. 试剂盒组件
· 缓冲液(1-15):各11 mL,含不同pH(6.0或8.5)、离子强度、辅助因子(如精氨酸、蔗糖)、去垢剂(Triton X-100、PEG 3350)及变性剂(盐酸胍)。
· 氧化还原系统:
o DTT(用于还原环境):添加到缓冲液1,3,5,7,9,11,13,15。
-
- GSH/GS-SH(氧化还原对):添加到缓冲液2,4,6,8,10,12,14,模拟细胞内氧化还原环境。
· 储存条件:DTT溶液4°C保存,GSH/GS-SH溶液-20°C保存。
4. 实验流程
1) 任务1:基础缓冲液筛选
a 包涵体处理:
o 纯化包涵体并溶解于8M尿素(含DTT)。
o 调整蛋白浓度至1 mg/mL。
b 复性反应:
o 向15管缓冲液(每管950 μL)中缓慢加入50 μL变性蛋白,轻柔混匀。
o 4°C或22°C孵育1小时,离心分离可溶性与沉淀部分。
c 结果评估:
o 功能活性检测:直接测定蛋白活性(推荐)。
o 免疫印迹/SDS-PAGE:分析可溶部分中目标蛋白含量。
o 体积排阻色谱(SEC):区分正确折叠与聚集蛋白。
d 数据分析:
o 构建表格对比各缓冲液条件的影响因子(pH、盐、去垢剂等)。
o 计算各因子的“相对效应值”(Relative Effect),确定关键参数。
2) 任务2:缓冲液优化
a 条件优化:
o 根据筛选结果,调整关键因素(如pH梯度、盐浓度范围)进行多水平测试。
o 评估高浓度蛋白(>1 mg/mL)下的复性效率。
b 规模化复性:
o 稀释法:适用于小规模(1-20 mg),需后续浓缩。
o 透析/超滤:适用于大规模(>20 mg),逐步去除变性剂。
o 示例:动态透析法(48小时梯度置换缓冲液)。
5. 补充方案
1) 包涵体纯化
步骤:
o 破碎细胞后离心收集包涵体。
o 用含4M尿素、去垢剂的洗涤液去除杂质。
o 溶解于6M盐酸胍或8M尿素(含DTT)。
o 关键点:优化洗涤条件(尿素浓度、去垢剂)以提高纯度。
2) 提高可溶性蛋白产量
o 培养基优化:测试不同培养基(如Turbo Broth™)对蛋白可溶性的影响。
o 分子伴侣共表达:诱导GroEL/GroES等伴侣蛋白,促进正确折叠。
6. 注意事项
n 储存与稳定性:GSH/GS-SH需分装避光保存,避免反复冻融。
n 实验验证:复性效率需通过功能活性验证,避免仅依赖SDS-PAGE结果。
n 规模化挑战:高浓度复性需防止聚集,建议结合透析与梯度稀释。
7. 应用与限制
n 适用场景:重组蛋白药物开发、酶学研究、抗体生产。
n 局限性:无法保证所有蛋白成功复性;需结合后续纯化步骤去除杂质。
总结:Theta试剂盒通过系统筛选与优化,为包涵体蛋白复性提供高效解决方案,平衡了实验效率与结果可靠性。用户需结合具体蛋白特性调整条件,并优先通过功能活性验证复性效果。
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文献和实验改进,提出了包括折叠漏斗和聚集漏斗的双折叠漏斗模型(Clark,2004)。基于该模型可知在大多数蛋白质的折叠过程中,与正确折叠相竞争的还有错误折叠和聚集沉淀,聚集态蛋白质具有与天然态相似的低自由能,处于聚集漏斗的底部,一旦形成将难以恢复天然活性态。 包涵体蛋白的复性 包涵体蛋白的复性步骤主要包括裂解、洗涤、溶解、复性。 裂解 大肠杆菌经发酵后,表达的外源蛋白多以稳定的包涵体形式存在于细胞质中,将其提取出来方法多采用超声破碎法,而由于超声处理量的限制,生产工艺一般采用高压均浆破碎,破碎后大肠
在得不到足够信息的情况下,往往比较难以分析,大家多是在假定一些信息来回答问题,这样有时候碰巧符合了,但也有推断错误的时候。这样对解决问题是不利的。 如果不涉及到技术保密问题,关于蛋白质纯化问题都建议按下列信息来提问。 1、建议贴张SDS-PAGE图来分析一下,最好包括: Marker,胶浓度,变性还是非变性 诱导前 诱导后 破菌上清 破菌沉淀 沉淀洗涤上清 变性溶解上清 变性溶解沉淀 柱纯化前 柱纯化穿透 柱洗脱 等各个样品。 标上marker大小,电泳
度和浊度测定:复性后的蛋白溶解度增加,变性状态时由于疏水残基暴露,一般水溶性很差,大多形成可见的沉淀析出。 6. 免疫学方法:如ELISA、WESTERN等,特别是对结构决定簇的抗体检验,比较真实的反映了蛋白质的折叠状态。 包涵体复性的方法 一个有效的、理想的折叠复性方法应具备以下几个特点:活性蛋白质的回收率高;正确复性的产物易于与错误折叠蛋白质分离;折叠复性后应得到浓度较高的蛋白质产品;折叠复性方法易于放大;复性过程耗时较少。 1. 透析、稀释和超滤复性法: 这三种
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