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包涵体蛋白重溶解折叠试剂盒

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  • ¥1998
  • 玺拓基因(Theta-gene)
  • K2002
  • 广州
  • 2026年04月02日
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      9

    • 英文名

      Theta Protein Refolding Kit

    • 保质期

      12个月

    • 供应商

      玺拓基因

    • 保存条件

      4度

    • 规格

      10 runs

    Theta Protein Refolding Kit

    组分

    Buffer 1

    11 mL

    Buffer 10

    11 mL

    Buffer 2

    11 Ml

    Buffer 11

    11 mL

    Buffer 3

    11 mL

    Buffer 12

    11 mL

    Buffer 4

    11 mL

    Buffer 13

    11 mL

    Buffer 5

    11 mL

    Buffer 14

    11 mL

    Buffer 6

    11 mL

    Buffer 15

    11 mL

    Buffer 7

    11 mL

    DTT

    1 mL

    Buffer 8

    11 mL

    Glutathione, reduced

    1 mL

    Buffer 9

    11 mL

    Glutathione, oxidized

    1 mL

     

    1.         产品概述

    ·         用途:用于从大肠杆菌表达的包涵体中复性重组蛋白,通过筛选15种不同缓冲液条件,快速确定最佳复性参数。

    ·         优势:采用部分因子实验设计(fractional factorial matrix),简化条件优化流程,节省时间和资源。

    ·         适用对象:需从包涵体回收活性蛋白的研究人员,适用于实验室规模到中试生产。

    2.         原理

    ·         蛋白质复性:包涵体中蛋白质因折叠中间体聚集而失活,复性需克服聚集并促进正确折叠。

    ·         关键影响因素:

    o    离子强度、pH、温度、氧化还原状态、去垢剂(如Triton X-100)、辅助因子(如精氨酸、蔗糖)及分子伴侣(如谷胱甘肽)。

    o    不同缓冲液组合通过调整上述参数,抑制非特异性聚集并促进折叠途径。

    ·         实验设计:15种缓冲液覆盖13个关键变量(如pH、盐浓度、去垢剂、氧化还原系统),通过统计学分析筛选主要影响因素。

    3.         试剂盒组件

    ·         缓冲液(1-15):各11 mL,含不同pH(6.0或8.5)、离子强度、辅助因子(如精氨酸、蔗糖)、去垢剂(Triton X-100、PEG 3350)及变性剂(盐酸胍)。

    ·         氧化还原系统:

    o    DTT(用于还原环境):添加到缓冲液1,3,5,7,9,11,13,15。

      • GSH/GS-SH(氧化还原对):添加到缓冲液2,4,6,8,10,12,14,模拟细胞内氧化还原环境。

    ·         储存条件:DTT溶液4°C保存,GSH/GS-SH溶液-20°C保存。

    4.         实验流程

    1)         任务1:基础缓冲液筛选

    a        包涵体处理

    o    纯化包涵体并溶解于8M尿素(含DTT)。

    o    调整蛋白浓度至1 mg/mL。

    b        复性反应

    o    向15管缓冲液(每管950 μL)中缓慢加入50 μL变性蛋白,轻柔混匀。

    o    4°C或22°C孵育1小时,离心分离可溶性与沉淀部分。

    c         结果评估

    o    功能活性检测:直接测定蛋白活性(推荐)。

    o    免疫印迹/SDS-PAGE:分析可溶部分中目标蛋白含量。

    o    体积排阻色谱(SEC):区分正确折叠与聚集蛋白。

    d        数据分析

    o    构建表格对比各缓冲液条件的影响因子(pH、盐、去垢剂等)。

    o    计算各因子的“相对效应值”(Relative Effect),确定关键参数。

    2)         任务2:缓冲液优化

    a        条件优化:

    o    根据筛选结果,调整关键因素(如pH梯度、盐浓度范围)进行多水平测试。

    o    评估高浓度蛋白(>1 mg/mL)下的复性效率。

    b       规模化复性:

    o    稀释法:适用于小规模(1-20 mg),需后续浓缩。

    o    透析/超滤:适用于大规模(>20 mg),逐步去除变性剂。

    o    示例:动态透析法(48小时梯度置换缓冲液)。

    5.         补充方案

    1)         包涵体纯化

    步骤:

    o    破碎细胞后离心收集包涵体。

    o    用含4M尿素、去垢剂的洗涤液去除杂质。

    o    溶解于6M盐酸胍或8M尿素(含DTT)。

    o    关键点:优化洗涤条件(尿素浓度、去垢剂)以提高纯度。

    2)         提高可溶性蛋白产量

    o    培养基优化:测试不同培养基(如Turbo Broth™)对蛋白可溶性的影响。

    o    分子伴侣共表达:诱导GroEL/GroES等伴侣蛋白,促进正确折叠。

    6.         注意事项

    n  储存与稳定性:GSH/GS-SH需分装避光保存,避免反复冻融。

    n  实验验证:复性效率需通过功能活性验证,避免仅依赖SDS-PAGE结果。

    n  规模化挑战:高浓度复性需防止聚集,建议结合透析与梯度稀释。

    7.         应用与限制

    n  适用场景:重组蛋白药物开发、酶学研究、抗体生产。

    n  局限性:无法保证所有蛋白成功复性;需结合后续纯化步骤去除杂质。

    总结:Theta试剂盒通过系统筛选与优化,为包涵体蛋白复性提供高效解决方案,平衡了实验效率与结果可靠性。用户需结合具体蛋白特性调整条件,并优先通过功能活性验证复性效果。

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