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10 mg
产品规格:10 mg
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文献和实验质,小分子或是金属。当融合有亲和标签的蛋白通过标签-配体作用结合再层析基质上时,通过洗杂步骤,即可去除掉其他的细胞成分。 为了洗脱所需要的蛋白质,通过改变缓冲液的条件,如pH,或通过竞争亲和标签和配体连接的方法来进行。 但怎样的纯化是较为成功的呢?仅达到所需的质量量级,如毫克级(或克级)即可满足吗? 这些并不简单。质在蛋白纯化中同样尤为重要,比如,就蛋白的生物活性和纯度而言,通常会有所要求。 以下我们来讨论并且比较2种技术: His-tag系统和Strep-tag®系统,都使用了亲和层析法来纯化
缓缓加入柱内,尽量避免气泡的产生。打开开关,保持尽量较低的流速(1 mL/min),待吸光值大于20时,用50 ml 离心管接流出的蛋白溶液,称流穿。流穿内的蛋白应为未与凝胶结合的菌体蛋白。 5. 洗涤 沿壁缓缓加入结合缓冲液,打开开关,走大于10柱体积的结合缓冲液,流速3 mL/min。使吸光值恢复到基线或接近于基线水平。 6. 洗脱 初次纯化一个新的重组蛋白一般选择40 mM、60 mM、80 mM 咪唑作为流洗浓度,主要洗脱非特异结合在凝胶中的菌体蛋白,100 mM
PEAS Labeling Gcn4-cys James Fishburn, Hahn Lab March 2006 Notes 10 mCi 125I = 4.6 nmol (see spec. sheet for calculation) 4.6 nmol Gcn4(1-118,209-281) = 103 microgram (M.W. 22,400) PEAS has low solubility in aqueous
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