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植物直扩PCR试剂盒(含染料)

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  • ¥700 - 1900
  • Arcegen
  • N132023
  • 美国
  • 2026年03月31日
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  • 企业认证

    • 详细信息
    • 文献和实验
    • 技术资料
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      现货

    • 英文名

      Plant Tissue Direct PCR Kit (With Dye)

    • 保质期

      一年

    • 供应商

      魔兜儿

    • 保存条件

      -20度

    • 规格

      50 T/200 T

    规格:50 T产品价格:¥700.0
    规格:200 T产品价格:¥1900.0

    产品简介

    本品是一款可直接对不同类型植物叶片进行PCR扩增的试剂盒,适应性广、稳定性强。试剂盒采用独特的裂解缓冲液体系,可以快速的裂解多种植物样品并释放出基因组DNA,不需要除去蛋白、RNA或次生代谢产物等,即可将释放出的基因组DNA作为模板直接用于PCR反应。此外,样品使用量少,低至1 mm植物叶片即可进行实验。

    本试剂盒中提供的2× Plant PCR Master Mix具有很强的扩增兼容性,能直接以待测样品裂解液为模板,进行高效特异性扩增。该试剂为2倍浓缩PCR反应混合液,包含了用于PCR扩增除模板和引物外的所有组分,大大简化操作过程,降低污染几率且含有示踪染料,PCR产物可直接电泳。

    该试剂盒可用于转基因植株鉴定、植物基因分型等。

    产品规格 

    产品货号

    N132023E

    N132023S

    产品规格

    50 T

    200 T

    组分信息

    组分编号

    组分名称

    N132023E

    (50 T)

    N132023S

    (200 T)

    储存条件

    N132023-A

    Buffer P1

    1.25 mL×2

    5 mL×2

    2-8℃

    N132023-B

    Buffer P2

    500 μL

    1 mL×2

    2-8℃

    N132023-C

    2 × Plant PCR Master Mix*

    500 μL

    1 mL×2

    -25~-15℃

    【注】:*2× Plant PCR Master Mix:包含热启动Taq DNA聚合酶、dNTP混合物、MgCl2、反应缓冲液、PCR反应增强剂、优化剂以及稳定剂等,同时包含电泳Loading Buffer,PCR完成之后可直接电泳。

    产品储存

    1. 试剂N132023-A【Buffer P1】,置于2-8℃保存。有效期1年。

    2. 试剂N132023-B【Buffer P2】,中和裂解产物,利于更长时间保存样本,置于2-8℃保存。有效期1年。

    3. 试剂N132023-C【2×Plant PCR Master Mix】,-25~-15℃保存,避免反复冻融。有效期1年。

    4. 试剂盒有效期1年。

    操作注意

    1) 做叶片实验时,建议使用新鲜采取的叶片组织,若为长期冷冻组织,需-80℃保存,应尽量避免反复冻融,以免造成模板降解,影响PCR效率。叶片组织以幼嫩为宜,若为成熟的叶片,避免使用叶片主脉部位组织。

    2) 建议扩增片段长度1 kb以内,以便扩增效率最佳。

    3) 取样时使用打孔器或者刀取适宜大小的样本,样本不同时,打孔器或者刀每次处理样本前需清洗干净。

    4) 对于叶片组织,建议取1-10 mm的叶片,过小会使PCR扩增产量低,过多会抑制PCR反应,采用加热裂解法、枪头捣碎、研磨仪破碎的方式处理植物叶片,处理后需震荡离心,务必取上清液试验,沉淀会严重抑制PCR反应。

    5) 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

    6) 本产品仅作科研用途!

    操作说明

    1. 植物叶片

    1) 研磨裂解法:

    a. 研磨仪破碎:将直径5 mm左右的叶片置于50 μL Buffer P1中,用研磨仪加钢珠(钢珠直径3 mm左右,共2个)破碎叶片(45 Hz,1 min),叶片破碎后溶液呈现绿色,瞬时离心,上清液请放在4℃备用,取1 μL用于PCR扩增。

    b. 枪头捣碎:推荐使用幼嫩叶片。将直径5 mm左右的叶片置于50 μL Buffer P1中,用枪头将叶片捣碎,捣碎后溶液呈现绿色,瞬时离心,上清液请放在4℃备用,取1 μL用于PCR扩增。

    2) 加热裂解法:推荐使用幼嫩叶片。将直径5 mm左右的叶片置于50 μL Buffer P1中,95℃加热5-10 min(确保裂解液完全浸没叶片),较难裂解的叶片(老叶片)可适当延长时间(10-20 min),加热裂解后溶液呈现绿色,震荡混匀,瞬时离心,上清液请放在4℃备用,取1 μL用于PCR扩增。

    3) 直接法:推荐使用幼嫩叶片。使用打孔器或者刀,将直径1 mm左右的叶片直接加入到PCR反应体系中;复杂样本或者是长片段的扩增,推荐使用直径<1 mm的叶片。

    2. PCR反应体系

    表1. PCR反应体系

    组分

    体积(μL)

    体积(μL)

    终浓度

    2× Plant PCR Master Mix

    10

    25

    Forward Primer (10 μM)

    0.5

    1

    0.2-0.25 μM

    Reverse Primer (10 μM)

    0.5

    1

    0.2-0.25 μM

    裂解产物(DNA模板)

    1

    2

    -

    ddH2O

    To 20

    To 50

    -

    【注】:各组分使用前应充分混匀。

    1) 模板加入量:小于PCR反应体系的5%,过多会严重抑制PCR反应,强烈推荐加入1 μL模板。叶片直扩优先推荐研磨仪裂解法。

    2) 引物终浓度:0.2-0.25 μM可以得到较好结果。反应性能较差时,可在0.1-0.5 μM范围内调整引物浓度。

    3) 反应体系:推荐使用20 μL或50 μL,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。

    4) 体系配制:配制好PCR反应体系,置于涡旋仪上涡旋混匀,瞬时离心将反应液集于管底。

    5) 对照反应:建议进行PCR时,设置阳性和阴性PCR对照反应以便于排除假阳性或假阴性的干扰。

    为了更稳定的保存裂解后的模板,将转移出来的上清液,按照裂解产物(DNA模板):Buffer P2 = 5:1的比例混合,混匀后-20℃保存,稳定保存随时间和样本状态不同而有所不同。如果处理后的植物叶片上清液一周内用于PCR扩增,不用加Buffer P2,上清液请保存在-20℃。

    3. PCR反应条件

    表2 PCR反应程序

    循环步骤

    温度(°C)

    时间

    循环数

    预变性

    94

    5 min

    1

    变性

    94

    10 sec

    35

    退火*

    50-65

    20 sec

    延伸**

    72

    1 min/kb

    终延伸

    72

    5 min

    1

    【注】:

    1) *退火温度:请参考引物的理论 Tm 值,退火温度可设置低于引物理论值 2-5℃。

    2) **延伸时间:需要根据片段的长度来确定,对于1 kb以内的DNA片段,建议延长时间为1 min。

    常见问题与解决方案

    常见问题

    可能原因

    解决方法

    阳性对照、待测样本均无条带。

    PCR反应体系或反应条件不合适。

    使用梯度PCR摸索PCR最佳反应条件。

    PCR试剂保存不当失去活性。

    2×PCR Mix应保存于-25~-15℃,使用时避免反复冻融。若使用频繁,可在2-8℃短时间存放。

    引物设计问题。

    尝试重新设计引物进行检查。

    阳性对照有目的条带,待测样本无条带或条带弱。

    不当储存或长期储存引起试剂活性丧失。

    使用新鲜的试剂。

    裂解液、中和液加入比例不当,裂解混合液影响PCR体系的pH值。

    正常条件下,中和后的裂解混合液的pH应该在7-8左右(裂解产物和Buffer P2严格按照5:1的量进行中和)。

    样本裂解混合液保存不当或保存时间过久,DNA基因组已经降解。

    裂解混合液可在2-8℃保存5天,尽量使用新制备的裂解液混合液进行PCR。

    模板加入量不适合。

    在反应体系<5%范围内优化模板加入量。

    PCR循环数不足。

    适当增加PCR的循环数,推荐在35-40循环为佳。因为模板复杂,一般PCR反应要比用纯化的DNA模板多5-10个循环为佳。

    非特异性扩增

    PCR退火温度太低,循环数、引物浓度或模板浓度太高。

    提高PCR退火温度,降低PCR循环数、引物浓度或模板浓度。

    PCR引物错配。

    重新设计PCR引物。

    配制PCR反应体系时温度太高或配制完成后放置时间太久。

    PCR反应体系的配制在低温下进行,配制完成后尽快进行PCR扩增反应。

    阴性对照出现目的条带

    操作工具或试剂污染。

    实验所有试剂或器材均应高压灭菌。操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。

    样本间交叉污染。

    每个取样器只对一个样本使用;或取完一个样本后,将取样器刃口浸入2%的次lv酸钠溶液中,反复涮洗,然后用干净的纸巾擦干残液。

     

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