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293T-HHLA2B7H7基因敲除入细胞

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  • 上海雅吉生物
  • 上海
  • YW-0735
  • 2025年07月14日
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      293T-HHLA2B7H7基因敲除入细胞

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    • 供应商

      雅吉生物

    • 细胞类型

      基因敲除

    • 品系

      敲除细胞系

    • 组织来源

      详见説明

    • 物种来源

      详见説明

    • 细胞形态

      贴壁,悬浮

    • 运输方式

      顺丰

    • 生长状态

      DMEM-H+10%FBS+1%P/S

    • 规格

      1×10^6cells/T25培养瓶

    雅吉生物细胞库依托上海细胞库天然优势,专业提供细胞技术服务。细胞质粒基因诱导表达,稳定细胞株pool,单克隆稳定细胞株筛选,药筛基因去除,诱导性表达质粒构建,转基因表达鉴定,包括:基因敲入/敲除,常规基因稳转、Luc1/2,诱导性表达,基因敲入/敲除,常规基因稳转、Luc1/2、诱导性表达,基因原位敲入/敲除,Cre转染、单克隆筛选、药筛基因去除鉴定等。更多细胞技术服务项目周期及报价咨询销售经理
    基因敲除的基本原理
    基因敲除技术基于DNA同源重组原理,通过设计特定的sgRNA(单导向RNA)引导Cas9核酸内切酶切割目标基因序列,从而引发细胞内的修复机制(如NHEJ或HDR),实现基因的敲除或修饰。这一过程通常包括构建含有目标基因序列的载体、转染到目标细胞中,并通过筛选和扩增获得基因敲除的单克隆细胞系

    293T-HHLA2B7H7基因敲除入细胞基因敲除细胞系的类型
    基因敲除细胞系可以分为多种类型,包括:
    单基因敲除:仅敲除一个特定基因,用于研究单一基因的功能。
    多基因敲除:同时敲除多个基因,用于研究基因间的相互作用。
    移码突变:通过插入或删除碱基导致蛋白质序列改变。
    片段敲除:仅敲除目标基因的部分序列

    产品细节图片1
    产品名称:293T-HHLA2B7H7基因敲除入细胞
    产品规格:1×10^6cells/T25培养瓶
    细胞收到后处理
    培养至良好状态后灌满完全培养液并封好瓶口是运输细胞的最好办法。收到细胞用75%酒精喷洒整个细胞瓶,消毒后放到超净台内严格无菌操作,将细胞瓶放入37℃、5%CO2的培养箱中静置3-4小时以稳定细胞状态后再做处理。显微镜观察细胞生长情况,并对细胞进行不同倍数拍照保存(最好40x,100x,200x各一张),前三天照片是重要售后依据,不提供照片默认收到状态良好。
    细胞培养步骤
    a、细胞传代:如果未超过80%汇合度时,将瓶装的完全培养液收集至离心管中,留5ml完全培养基,放入37℃、5%CO2孵箱培养;如果细胞密度超80%,即可进行传代培养。
    贴壁细胞传代步骤如下:
    1. 弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
    2. 添加0.25%胰蛋白酶消化液约1-2ml至培养瓶中,置于37℃培养箱中消化1-2min,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加5ml以上完全培养基终止消化。
    3.轻轻吹打细胞,使之完全脱落后吸出,然后将悬液转移至15ml离心管中,在1000RPM条件下离心5分钟,弃去上清液,补加1-2mL完全培养基重悬。
    4. 将细胞悬液按1:2的比例进行分瓶传代(两个T25瓶),补充新的完全培养基至5-8ml/瓶,最后放入到37℃、5%CO2的细胞培养箱中培养。

    产品细节图片2
    293T-HHLA2B7H7基因敲除入细胞悬浮细胞传代步骤日下:
    1、半换液法
    半换液处理,竖着培养瓶在培养箱静置1小时左右,轻轻吸掉3ml左右培养基,然后补给3ml的完全培养基,如果培养基变色慢,可直接加500ul左右FBS,传代的时候可以直接补给5ml培养基  分两个培养瓶培养,一般这样传代3次左右可以离心传代一次,去掉死细胞。
    2、离心换液法
    如需分瓶可以将细胞悬液收集到离心管中1000rpm,离心5min,弃去上清,补加1-2mL培养液后重悬混匀后将细胞悬液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照说明书要求配置的新的完全培养基以保持细胞的生长活力,后续传代根据实际情况按1:2~1:5的比例进行。
    b、细胞冻存:
    1、细胞生长至覆盖培养瓶的80%面积时,弃T25培养瓶中的培养液,用PBS清洗细胞一次; 
    2、添加0.25%胰蛋白酶消化液约1ml至培养瓶中,倒置显微镜下观察,待细胞回缩变圆后加入5ml完全培养液终止消化,再轻轻吹打细胞使之脱落,然后将悬液转移至15ml离心管中,1000rpm离心 5min; 
    3、 弃上清,沉淀细胞加入1ml的雅吉生物无血清冻存液,混匀后加入冻存管中。 
    4、 将冻存细胞直接放入-80℃冰箱即可,如后期要将细胞转入液氮罐中,则需在-80℃冰箱 中存放24小时以上再转入液氮罐中。
    C、细胞复苏:
    1、从液氮中取出细胞冻存管(注意佩戴防护面具),快速将其置入 37℃水浴中解冻, 直至冻存管中无结晶,然后用75%的酒精擦拭冻存管外壁; 
    2、将冻存管中的细胞移至含 5ml 完全培养基的15ml离心管中,1000rpm离心5min; 
    3、弃上清,沉淀用5ml完全培养基重悬,接种至T25培养瓶,放于37℃,5%CO2细胞培养箱中培养;
    4、第二天,换用新鲜完全培养基继续培养。

    293T-HHLA2B7H7基因敲除入细胞注意事项
    细胞状态: 确保细胞在转染前处于最佳生长状态,避免使用老化或污染的细胞。
    转染效率: 不同细胞系的转染效率差异较大,需优化转染条件。
    筛选药物: 筛选药物的浓度需根据细胞系和载体进行优化,避免过度筛选导致细胞死亡。
    单克隆筛选: 单克隆筛选是获得高表达稳转株的关键步骤,需耐心细致操作。
    冻存与复苏: 冻存和复苏过程中需严格控制温度和时间,避免细胞损伤。

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    • 阅「鼠」无数后,有些话必须告诉你

      或 F1 代。特点:个体间遗传均一,其基因位点均为杂合型,实验结果比较一致;具有杂种优势,如体质健壮、生长快、易于饲养管理、发育均匀等优点。● 回 交用于遗传背景的纯化:在基因工程小鼠模型(例如基因敲除、基因敲入等)的应用中,由于小鼠胚胎干细胞品系的局限性,通过胚胎干细胞打靶技术获得的特定基因修饰小鼠遗传背景与研究者希望的实验小鼠遗传背景可能是不一致的。这时就需要通过与特定近交系小鼠回交的方式,将实验小鼠从一种遗传背景(A)转换到另一种研究人员想要的遗传背景(B)上去。随着回交代数的增加,后代小鼠中

    • 细胞转染实验

      本次实验采用的脂质体是promega公司的TransFast脂质体试剂,它是一种阳离子脂质体和中性脂质体的混合物,是对于本次实验中采用的293T细胞优化的转染试剂。 三、实验材料与器材 1、材料 293T细胞 MyoD表达质粒和EGFP表达质粒 DMEM培养基 链霉素/青霉素(双抗) FCS(小牛血清) PBS(磷酸盐缓冲溶液) 胰酶/EDTA消化液 转染试剂(TransFast2、器材 20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip头 酒精

    • 细胞培养和转染

      第三章 细胞培养和转染 1. 细胞培养(HEK293T) 1) 显微镜下观察细胞细胞生长状态良好,去上清; 2) 加入预热的PBS 3ml, 温柔地清洗细胞,弃去PBS; 3) 用胰蛋白酶消化细胞,通常75cm2 培养瓶的贴壁细胞用3ml 胰蛋白酶于37oC 处理5min; 4) 待细胞脱落后,加入5ml DMEM 培养液(含10%FBS)以终止消化反应,并将 细胞悬液转移15ml 或50ml 离心管中; 5) 1000rpm 离心5min,去除上清

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