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文献和实验感染细胞的基因组,进行长时间的稳定表达。 (2)服务流程 1)含目的基因的慢病毒RNAi干扰载体的构建和纯化提取; 2)慢病毒干扰载体、pGag/Pol、pRev、pVSV-G四质粒共转染293T细胞; 3)培养48~72h,收集培养上清; 4)病毒的纯化和浓缩(超离和/或超滤); 5)滴度测定、目的基因检定 6)将制得的慢病毒液转导客户的靶细胞,筛选混合稳定细胞株,并检测靶基因的表达。 客户提供 1)表达miRNA/shRNA的质粒(提供测序图谱)或所要
酶活性;2. 10×CIP 缓冲液和 1U CIP,混合后,37 ℃ 孵育 30~60 min,然后 75 ℃ 加热 15 min 灭活 CIP 活性;3. 琼脂糖凝胶电泳分离并纯化目的 DNA 片段用于连接反应。(二)连接反应【实验试剂与器材】1. T4 DNA 连接酶2. 10×T4 连接酶缓冲液【实验方法与步骤】反应体系:质粒 DNA (0.5(g/? 滋 l) 2? 滋 lDNA 插入片段 (300ng/? 滋 l) 5? 滋 l10× 连接缓冲液 1? 滋 lT4 DNA 连接酶 1? 滋 l加水
的方法进行质粒DNA的提取,所用具体试剂见表1: ①挑取单菌落,接种于4. 0mlLB (含氨苄青霉素)液体培养基中, 37℃、250 rpm振荡培养过夜(约12~14h) 。②取1. 5ml培养物加入Eppendorf管中,室温12000g离心1min,弃上清。③将细菌沉淀重悬于100μl预冷的溶液Ⅰ中,剧烈振荡,使菌体分散混匀。④加200μl新鲜配制的溶液Ⅱ,颠倒数次混匀(不要剧烈振荡) ,并将离心管放置于冰上2min。⑤加入150μl预冷的溶液Ⅲ,将管温和颠倒数次混匀冰上放置3min。⑥加入
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