多聚赖氨酸溶液(10×PLL,1mg/ml,无菌)，RC61

多聚赖氨酸的配置、保存、使用

用。 因为多聚赖氨酸对细胞有一定毒性，所以在保证贴附的前提下，尽量使用低点儿的浓度。 （2）无菌处理： PLL不可以高温消毒，故应过滤除均，分装于无菌处理的细胞冻存管内，1ml/管，封口模密封，4度保存。另外，准备无菌去离子水50ml。 （3）配置工作液： 用移液枪吸取0.3ml PLL＋3ml 无菌去离子水，混匀放于10ml无菌塑料离心管中。封口模密封后4度存放。 （4）玻片

多聚赖氨酸（Poly-L-Lysine）的配制、保存、使用总结

水，混匀放于10ml无菌塑料离心管中。封口模密封后4度存放。 （4）玻片处理：常规处理的盖玻片，纱布“夹心饼式”消毒、保存。铺片于培养皿中，移液枪将PLL工作液“滴加于”玻片上，室温10分钟后，用消毒好的纱布条吸取玻片上的PLL液。在超静台内风干后使用，或者超静台内过夜晾干，次日使用。 （5）常规细胞消化，离心后爬片。 如果既然细胞生长状态良好，染色时不掉片，可以不用PLL。有些细胞，如神经元就必须要PLL包，要不细胞生长受影响，也会掉片。二十二、制备多聚赖氨酸盖玻片方法一 用超纯水配成母液

多聚赖氨酸实验中经典问题分析

。 如果你做免疫组化 ，需要放小的玻片到孔内，就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。 问：PLL的分子量有3-5万，7-15万，15-30万几种，应怎样选择??谢谢：) 答：我们养神经细胞，用的是分子量3万到7万的pll 。 以PBS配成1mg/ml的母液，-20度保存。使用时，用高纯度的蒸馏水稀释成0.11mg/ml的使用浓度，过滤除菌，以50微升每平方厘米的量均匀涂于培养底物的表面，室温下静置5min，吸除多余液体，股风吹干即可