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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
199
- 英文名:
Plasmodium falciparum Detection Kit
- 保质期:
12个月
- 供应商:
上海烜雅生物科技有限公司
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
50T
【产品名称】
通用名称:恶性疟原虫(PF)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
Name :Plasmodium falciparum Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】50T/盒
【预期用途】 本试剂盒适用于检测全血等样本中的恶性疟原虫,用于恶性疟原虫感染的辅助诊断。
【检验原理】 本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对恶性疟原虫特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对恶性疟原虫的核酸进行体外扩增检测,用于科研实验中对可疑感染者的病原学检测。

【试剂组成】
说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
【储存条件及有效期】 -20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
【适用仪器】 ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】 用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管
【保存和运输】 上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

【使用方法】
1. 样品处理(样本处理区)
1.1 样本前处理 取抗凝血下层血细胞 50μL,加入 100μL 双蒸水吹匀
1.2 DNA 提取 1) DNA 的提取也可以采用上海烜雅生物科技有限公司生产的 DNA 提取试剂盒(离心柱提取法),请严格按照试剂盒说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
3. 加样(样本处理区) 将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。
4. PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL; 荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye) NONE,请勿选择 ROX 参比荧光。
4.3 推荐循环参数设置:
5. 结果分析判定
6. 结果分析判定
5.1 结果分析条件设定 设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
5.2 结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线; 可疑:检测通道 3538 或无 Ct 值。
7. 质控标准 阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
8. 检测方法的局限性
样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
【注意事项】
1. 所有操作严格按照说明书进行;
2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
3. 反应液应避光保存;
4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

恶性疟原虫(PF)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)相关产品:
通用名称:恶性疟原虫(PF)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
Name :Plasmodium falciparum Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】50T/盒
【预期用途】 本试剂盒适用于检测全血等样本中的恶性疟原虫,用于恶性疟原虫感染的辅助诊断。
【检验原理】 本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对恶性疟原虫特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对恶性疟原虫的核酸进行体外扩增检测,用于科研实验中对可疑感染者的病原学检测。

【试剂组成】
| 包装规格 | 50T/盒 |
| PF 反应液 | 500μL×2 管 |
| 酶液 | 50μL×1 管 |
| PF 阳性质控品 | 50μL ×1 管 |
| 阴性质控品 | 250μL ×1 管 |
【储存条件及有效期】 -20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
【适用仪器】 ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】 用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管
【保存和运输】 上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

【使用方法】
1. 样品处理(样本处理区)
1.1 样本前处理 取抗凝血下层血细胞 50μL,加入 100μL 双蒸水吹匀
1.2 DNA 提取 1) DNA 的提取也可以采用上海烜雅生物科技有限公司生产的 DNA 提取试剂盒(离心柱提取法),请严格按照试剂盒说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
| 试剂 | PF 反应液 | 酶液 |
| 用量(样本数为 N) | 20μL | 1μL |
4. PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL; 荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye) NONE,请勿选择 ROX 参比荧光。
4.3 推荐循环参数设置:
| 步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 | 收集荧光信号 |
| 1 | 1 cycle | 95℃ | 10min | 否 |
| 2 | 45 cycle | 94℃ | 15sec | 否 |
| 55℃ | 30sec | 是 |
6. 结果分析判定
5.1 结果分析条件设定 设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
5.2 结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线; 可疑:检测通道 35
7. 质控标准 阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
8. 检测方法的局限性
样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
【注意事项】
1. 所有操作严格按照说明书进行;
2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
3. 反应液应避光保存;
4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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恶性疟原虫(PF)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
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