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上海冠导生物工程有限公司
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≥100瓶
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常温运输【复苏细胞】或干冰运输【冻存细胞】
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A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
- 规格:
1*10(6)Cellls/瓶
"A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
传代方法:1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性:贴壁生长
换液频率:每周2-3次
背景资料:A172细胞在半固体培养基中可形成克隆;A172细胞在免疫抑制小鼠中不成瘤。最初分离自一名患者的胶质母细胞瘤组织,在培养中表现出典型的胶质瘤细胞形态,如多形性、核异型性、高核质比等。
培养细胞真的不难,Zui关键几点:1)所有的东西使用,如果你用的血清、培养皿、培养基、胰酶什么的都是进口的,真的很难相信你会把细胞养坏;2)动作要快,胰酶消化,换什么,细胞暴露在空气中的时间越少越HAO。另外,要掌握HAO胰酶消化时间,所谓的细胞状态差,很多时候是传代的原因;3)有时间的话,需要细胞计数,传相应数目的细胞到培养皿中,可以大致清楚细胞的生长曲线,不会临时要处理,手足无措;4)要做什么心里要非常清楚,合理安排时间,传代细胞的实验穿插进行,可以节省很多时间,也不会耽误别人的实验;5)个人的实验器具自己收一套,不要和别人混用,Zui近换了什么新的东西稍微记一下,试剂一旦怀疑污染,马上丢;6)传代细胞不能进去太多人,避免相互干扰。每天对待细胞比孝敬爹妈还用心,那真是捧在手里怕碎了,含在嘴里怕化了,看在眼里怕丢了,培养细胞时有哪些经验教训可以分享呢?1)严格无菌操作,多喷喷酒精,要是对灭菌的东西不放心,自己包自己送自己烘干;2)不要和别人共用试剂耗材,自己准备一套;3)有可能的话在拿到新细胞的时候做HAO支原体衣原体检测;4)水浴锅很脏,生化培养箱要是得手动加湿的话盘里的水也会很脏,勤换(灭菌水加进去);5)晚上离开的时候ZuiHAO给传代细胞照紫外,超净台是用完就开;6)是同一时间就你一个人在用传代细胞在养细胞。
S91 Cells;背景说明:黑色素瘤;雄性;DBA;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:EFM192 Cells、Walker-256 Cells、MDAMB134 Cells
SaOS-2 Cells;背景说明:该细胞是FoghJ和TrempeG分离和鉴定的众多人类肿瘤细胞系中的一种;该细胞来自一位11岁的白人女性的骨肉瘤组织。患者经过放疗以及甲喋呤、阿霉素、长春新碱、环磷酰胺和aramycin-C等多种药物治疗。该细胞在免疫抑制小鼠中不致瘤,细胞表达表皮生长因子EGF受体、转化生长因子β(1型和2型)受体。;传代方法:1:2-1:4传代;每周1-2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;多角形;相关产品有:A2058 Cells、HO8910PM Cells、LNCaP-FGC Cells
Duke University 4475 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2—3次;生长特性:悬浮,多细胞聚集;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:SUM-190PT Cells、EM3 Cells、CMT64 Cells
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A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
产品包装形式:复苏细胞:T25培养瓶(一瓶)或冻存细胞:1ml冻存管(两支)
来源说明:细胞主要来源ATCC、DSMZ等细胞库
物种来源:Human\Mouse\Rat\Others
Radiation Effects Research Foundation-Lung Cancer-MS Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:OCLY8 Cells、HCC-15 Cells、HPAF Cells
8E4 [Mouse hybridoma against ouabain] Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BL-6 Cells;背景说明:黑色素瘤;雄性;C57BL/6;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CAL62 Cells、Hs729 Cells、HemECs Cells
B16/F1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:H345 Cells、HEK293E Cells、NCIH1648 Cells
形态特性:上皮细胞样
A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
绝大部分细胞消化只要用胰酶润洗一遍即可:吸去胰酶后,残留的那些无法计算体积的附着在细胞表面的微量胰酶在37℃一般不到2min足够消化细胞(绝大部分1min不到)。对于这些细胞原则上不要用胰酶孵育细胞,连续这样传代,对细胞伤害很大。简单的程序是PBS润洗吸去,胰酶润洗吸去,然后37℃消化。什么算是消化好了呢?不需要把细胞全部消化成间隔分布很离散的单个圆形才算消化好了,一般你肉眼观察贴壁细胞层,只要能移动了,多半呈沙状移动,其实已经是可以了。一般能移动了,说明细胞与培养基质材料的附着已经消失了,细胞之间的附着也已经消失了,细胞已经独立分布了(虽然没有呈现很广的离散分布)。这个时候应该停止消化,不要等到看到镜下所有细胞都分离得非常好,间隙很大,才停止。细胞系在贴壁的过程中仍然会聚集,这个是贴壁培养的细胞,尤其是肿瘤细胞的一个特性,你可以尝试,准备100%的单个细胞悬液,贴壁后观察细胞,仍然是几个几个细胞聚集在一起。一些悬浮培养细胞也是如此,容易聚集,不要过几个小时就拿出来吹打成单细胞悬液。细胞只要能从基质上脱离下来,即使是成片的(比如Calu-3细胞),吹打不超过20次(一般10次即可),成小规模聚集(10个细胞左右)是正常的,不要再去延长消化时间,等待单细胞悬液出现。比较难消化的细胞:润洗方法5min还不能消化,以结肠癌细胞为例,比如:HCT15、LS411和KM12细胞,胰酶消化,一般10 cm培养皿,一次加入300ul-500ul就足够了。即使这样难消化的细胞,一般不超过5min,即可见细胞成片移动,就应该停止消化。一些正常细胞也会有难消化的时候,比如tsDC细胞,用胰酶孵育,3min左右即可看到成片沙状移动。
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活细胞:通常具有透亮的外观、完整的细胞膜,以及清晰可见的细胞核和细胞质内的细胞器。对于贴壁细胞,活细胞能够牢固地贴附在培养皿或培养瓶上。死细胞:则呈现暗淡无光、细胞膜可能碎裂的状态,且无法有效贴壁(对于贴壁细胞而言)。悬浮细胞死细胞则可能表现出膜碎裂、内容物外泄等现象。不同类型的细胞具有特定的生长形态,如成纤维型细胞呈细长形状并附着在基质上生长,上皮型细胞呈多边形等。观察细胞是否保持其特有的生长形态也是判断细胞状态的重要依据。细胞培养员应及时记录细胞培养过程中的关键数据,包括细胞形态、染色结果、生长速度等。建立完善的数据记录系统,有助于追踪细胞状态的变化,并为后续分析提供依据。
Clone 15 HL-60 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:维持细胞浓度在1×105-1×106/ml,每2-3天换液1次。;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:Hs-578Bst Cells、CW-2 Cells、KU-19-19 Cells
MT4 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;圆形;相关产品有:B6Tert-1 Cells、XWLC-05 Cells、MRC-5 Cells
HPDLF Cells;背景说明:牙周膜;成纤维 Cells;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HCC2935 Cells、MLO-Y4 Cells、J774 A.1 Cells
F-81 Cells;背景说明:肾;自发永生;雌性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:BIC Cells、WM266 Cells、X63 Cells
MDA-MB 361 Cells;背景说明:该细胞源自40岁女性乳腺癌的脑转移组织。;传代方法: 1:2—1:6传代,每周换液2—3次;生长特性:松散贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:Roswell Park Memorial Institute 6666 Cells、HUASMC Cells、SF-126 Cells
FU-OV-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCIH526 Cells、MDA-MB-231-GFP Cells、U-CH1 Cells
Hs 294T Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代,2-3天换液1次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:混合星状和多边形;相关产品有:NTERA-2 clone D1 Cells、OVCAR.5 Cells、CHL Cells
H2172 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:6传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:alphaTC clone 6 Cells、Med 341 Cells、MKN74 Cells
HuH-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NIH:OVCAR-8 Cells、DHL10 Cells、NCI-H2291 Cells
A375.S2 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:DMS-153 Cells、NH6 Cells、NOZAWA Cells
3T3NIH Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LX-2 Cells、HCC1395 Cells、OV1-P Cells
G-292 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:U-CH1 Cells、NCTC clone 1469 Cells、H-647 Cells
RPMI no 8226 Cells;背景说明:来源于一位61岁的男性浆细胞瘤患者;可产生免疫球蛋白轻链,未检测到重链。;传代方法:按1:2传代,5-6小时可以看到细胞分裂;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:NCIH82 Cells、KYSE-450 Cells、ARH77 Cells
RWPE1 Cells;背景说明:肿瘤抑制基因: p53 + [PubMed: 9214605] pRB + [PubMed: 9214605] 一位正常男性前列腺组织切片的周围区域的上皮细胞用单拷贝的人乳头瘤病毒的18(HPV-18)进行转化,建立了RWPE-1 (ATCC CRL-11609) 细胞株 [PubMed: 9214605]. 在三维Matrigel培养时,在雄激素作用下,RWPE-1细胞形成腺胞并向培养基中分泌PSA。[PubMed: 11170142]. 当与Matrigel或基质细胞混合注射雄性裸鼠时,RWPE-1细胞也能形成腺胞[PubMed: 11304724] 并产生PSA。 来源于RWPE-1的细胞再用Kirstin鼠类肿瘤病毒转染Ki-ras基因,建立了能成瘤的RWPE-2细胞株(ATCC CRL-11610) [PubMed: 9214605] 和 RWPE2-W99 (ATCC CRL-2853) 细胞株。 另外,用N--N-(MNU)处理RWPE-1,建立了一系列模拟前列腺癌进程中不同时期的成瘤细胞株。 它们是 WPE1-NA22 (ATCC CRL-2849), WPE1-NB14 (ATCC CRL-2850, WPE1-NB11 (ATCC CRL-2851) 和 WPE1-NB26 (ATCC CRL-2852) 细胞株。 据提供者报道,RWPE-1 细胞株(ATCC CRL-11609)经过检测,乙肝、丙肝、都呈阴性。;传代方法:1:3传代,2-3天传一代。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:Walker-256 Cells、mIMCD3 Cells、P3-X63-Ag8.653 Cells
HSKMC Cells;背景说明:骨骼肌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:C8166-CD4 Cells、MD Anderson-Metastatic Breast-157 Cells、SIRC Cells
RERF-LC-MS Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:NH6 Cells、H-211 Cells、RBL-I Cells
GM-346 Cells;背景说明:皮下结缔组织;自发永生;雄性;C3H/An;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:OVHM Cells、KM H-2 Cells、NBLS Cells
22MA Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Abcam HeLa PHLDA3 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AG24250 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRH154 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XH214 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
C0996 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
D-263MG Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
EC-Adamts5tm1Dgen Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GM04877 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MD Anderson-Metastatic Breast-435 Cells;背景说明:乳腺癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LNCaP-FGC Cells、HOC-1 Cells、CMT-64 Cells
BEAS2B Cells;背景说明:从一位非癌个体的正常人支气管上皮病理切片分离出上皮细胞。这些细胞用腺病毒12-SV40病毒杂交病毒感染并克隆。DEAS-2B细胞保留了对血清反应进行鳞关分化的能力,并有用于筛选诱导或影响分化及致癌的化学或生物制剂。细胞角蛋白及SV40抗原染色阳性。;传代方法:消化3-5分钟。1:2。3天内可长满;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:JOSK-M Cells、MCA 38 Cells、WM-239-A Cells
S.B. Cells;背景说明:急性T淋巴细胞白血病;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:BEL7402 Cells、HEK-293-EBNA Cells、DU 145 Cells
SuDHL 4 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:淋巴母细胞;相关产品有:Evsa T Cells、H-1876 Cells、WTRL1 Cells
EFM192C Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:C3H/10T1/2-clone8 Cells、LS411N Cells、H3255_DA Cells
HCC202 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:NKM1 Cells、WEHI 164 TC Cells、SUDHL16 Cells
HEK-293-H Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LK-2 Cells、Reh Cells、SHG 44 Cells
DMS 153 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Hs852T Cells、CHO Cells、T/G HA VSMC Cells
SKMES Cells;背景说明:源于一位65岁患有肺鳞状细胞癌的白人男性,自转移性胸腔积液分离而来。;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:THLE2 Cells、HcerEpic Cells、hFOB1.19 Cells
U-138MG Cells;背景说明:星形细胞瘤;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NS-20Y Cells、PC-9S1 Cells、HFTF Cells
UACC-893 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:HGC27 Cells、NCIH810 Cells、NB19 Cells
A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
H-929 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:保持细胞密度在5×105—1×106 cells/ml之间,每周换液2—3次;生长特性:悬浮生长 ;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:C3H/10T1/2 CL8 Cells、ZR751 Cells、NCI-H661 Cells
NKL Cells;背景说明:NK细胞淋巴瘤/白血病;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Kobe university Oral Squamous Cell culture-2 Cells、C4-2 B Cells、SW 1222 Cells
CAL85-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:COLO-684 Cells、GM03569D Cells、SGC-7901/DDP Cells
HBVSMC Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CAL-27 Cells、Kelly Cells、OCI AML4 Cells
GM23309 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 MSH6 (-) 1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Stanford University-Diffuse Histiocytic Lymphoma-1 Cells;背景说明:间变性大细胞淋巴瘤;胸腔积液转移;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:A375SM Cells、RL-95-2 Cells、IB-RS-2 Cells
A427 Cells;背景说明:肺腺癌;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CCD 841 CoN Cells、SW 954 Cells、RH-35 Cells
WiDrTC Cells;背景说明:结肠癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SNU-251 Cells、H-1954 Cells、CHO-K1 Cells
BIU-87/Adr Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:OVCA 432 Cells、PF-382 Cells、KYSE50 Cells
Glioma 261 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:A431 Cells、KYSE450 Cells、WM 115 Cells
VM Cub 1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:INS1E Cells、HLEpiC Cells、22Rv1 Cells
MDCK-2 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3传代,3-4天传1次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:Ku812F Cells、HS578T Cells、Swiss/3T3 Cells
Acanthosis Nigricans 3rd attempt-CArcinoma Cells;背景说明:AN3CA细胞建系于1964年。它衍生于子宫内膜癌患者淋巴结转移组织,具有癌细胞的基本特性,能在体外长期传代培养,接种实验动物产生明显肿瘤。但细胞的生物学特性及超微结构尚未深入研究,仅发现该细胞系促黑激素合成为阴性。细胞常用于人子宫内膜癌细胞生物学及其相关特性研究。;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:U251 Cells、SNU1040 Cells、MLFC Cells
HQ00702 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
KDI/20 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MHH-TALL-2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
NLFrGEMCI20 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
RBE4 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Ubigene A-549 CCND3 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
UOK117-5 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Hepa-1aV1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
WM 115 Cells;背景说明:黑色素瘤;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:FU-OV-1 Cells、N-2a Cells、BT325 Cells
U-138-MG Cells;背景说明:星形细胞瘤;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SK-GT-2 Cells、HNSC Cells、RIN-m5F Cells
Hs445 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SK-RC-39 Cells、CAL85-1 Cells、CEM-C1 Cells
EAHY-926 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:TCCPAN2 Cells、RMS13 Cells、RKOAS451 Cells
FAO-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:上皮细胞;相关产品有:LS 174 T Cells、CORL23 Cells、NCI-H2330 Cells
FAO-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:上皮细胞;相关产品有:LS 174 T Cells、CORL23 Cells、NCI-H2330 Cells
Caco-2BBe Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:6—1:10传代,每周换液2次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:SW 954 Cells、SCC-9 Cells、NCI-H2141 Cells
TGBC-11-TKB Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:RPMI7951 Cells、J82 COT Cells、LC-1 sq Cells
AR42J Cells;背景说明:在肾上腺皮质激素刺激下可诱导出外分泌活性,并伴有广泛的内质网重构。;传代方法:消化3-5分钟。1:2。3天内可长满。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:COR-L88 Cells、TI-73 Cells、HeLa S 3 Cells
ASH-3 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:H-1703 Cells、SW756 Cells、NCI-H2342 Cells
Factor Dependent Cell-Paterson 1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:2-3天换液1次;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞;相关产品有:HeLa S-3 Cells、RPMI-8402 Cells、G-Olig2 Cells
Farage Cells;背景说明:Farage细胞源于一名患有弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL)白人女性的活检淋巴组织,由HBen-Bassat建系。经IL-4处理,该细胞CD21,CD22,CD54和CD58表达上调,而CD21,CD22,andCD38表达下调。;传代方法:1:3传代,2-3天传一代;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:NRK clone 52E Cells、NTera2/D1 Cells、H-1522 Cells
TB1 Lu Cells;背景说明:肺;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SK_HEP1 Cells、P3HR-1 Cells、LA-N-1 Cells
A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
H2108 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:MES-13 Cells、H-2405 Cells、NCIH69 Cells
Pa17C Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:H-345 Cells、2B4-L Cells、HT 1197.T Cells
STAN250i-622C2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Henrietta Lacks cells Cells;背景说明:HeLa是第一个来自人体组织经连续培养获得的非整倍体上皮样细胞系,它由GeyGO等在1951年从31岁女性黑人的宫颈癌组织建立。经原始组织切片重新观察,Jones等将其诊断为腺癌。已知该细胞系含有人乳头状瘤病毒HPV18序列,需在2级生物安全防护台操作。该细胞角蛋白阳性,p53表达量较低,但表达正常水平的pRB(视网膜母细胞瘤抑制因子)。;传代方法:1:3传代,2-3天换液一次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:IM 9 Cells、OVHM Cells、MOLT16 Cells
Metastatic Variant-522 Cells;背景说明:肺腺癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCI-H2291 Cells、GH 3 Cells、Granta 519 Cells
HEC151 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Monomac-1 Cells、LN-382 Cells、253J Cells
T8 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Lu-65 Cells、SK-SH-SY5Y Cells、RCC23 Cells
HOP-62 Cells;背景说明:肺癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LK2 Cells、HUTU80 Cells、T24 Cells
HT 1080 Cells;背景说明:该细胞源自一名35岁患有纤维肉瘤的白人男性的结缔组织;ras+。;传代方法:1:4-1:8传代;2-3天换液1次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:KG1A Cells、SKNBE(2) Cells、RMG-1 Cells
DMS114 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代;每周换液2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LL/2 Cells、Nb 2 Cells、HCC-9204 Cells
B-104 Cells;背景说明:神经母细胞瘤;BDIX;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:COLO-320DM Cells、SaOS Cells、RMS 13 Cells
HECCL-1 Cells;背景说明:子宫内膜癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:K422 Cells、OK Cells、H-1694 Cells
ECC 10 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LC1-Sq Cells、SUPB15 Cells、DHL5 Cells
Hs739T Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2—1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:混合型;相关产品有:OCI-Ly 7 Cells、RPMI 7951 Cells、Hs 274 Cells
KPL-1 Cells;背景说明:浸润性导管癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:GM2219C Cells、X63-Ag8 Cells、D-324 Med Cells
RCC-10RGB Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:VP 229 Cells、McA-RH 7777 Cells、HeLa 229 Cells
CALU1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:消化10分钟。1:2。3-4天长满;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:H3255 Cells、Colo205 Cells、IAR-20 Cells
BayGenomics ES cell line CSH383 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRY128 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Beta-LG MAb 63 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
KM3955 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
PCRP-ZSCAN22-1A12 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
P2A8(6) Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
"
传代方法:1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性:贴壁生长
换液频率:每周2-3次
背景资料:A172细胞在半固体培养基中可形成克隆;A172细胞在免疫抑制小鼠中不成瘤。最初分离自一名患者的胶质母细胞瘤组织,在培养中表现出典型的胶质瘤细胞形态,如多形性、核异型性、高核质比等。
培养细胞真的不难,Zui关键几点:1)所有的东西使用,如果你用的血清、培养皿、培养基、胰酶什么的都是进口的,真的很难相信你会把细胞养坏;2)动作要快,胰酶消化,换什么,细胞暴露在空气中的时间越少越HAO。另外,要掌握HAO胰酶消化时间,所谓的细胞状态差,很多时候是传代的原因;3)有时间的话,需要细胞计数,传相应数目的细胞到培养皿中,可以大致清楚细胞的生长曲线,不会临时要处理,手足无措;4)要做什么心里要非常清楚,合理安排时间,传代细胞的实验穿插进行,可以节省很多时间,也不会耽误别人的实验;5)个人的实验器具自己收一套,不要和别人混用,Zui近换了什么新的东西稍微记一下,试剂一旦怀疑污染,马上丢;6)传代细胞不能进去太多人,避免相互干扰。每天对待细胞比孝敬爹妈还用心,那真是捧在手里怕碎了,含在嘴里怕化了,看在眼里怕丢了,培养细胞时有哪些经验教训可以分享呢?1)严格无菌操作,多喷喷酒精,要是对灭菌的东西不放心,自己包自己送自己烘干;2)不要和别人共用试剂耗材,自己准备一套;3)有可能的话在拿到新细胞的时候做HAO支原体衣原体检测;4)水浴锅很脏,生化培养箱要是得手动加湿的话盘里的水也会很脏,勤换(灭菌水加进去);5)晚上离开的时候ZuiHAO给传代细胞照紫外,超净台是用完就开;6)是同一时间就你一个人在用传代细胞在养细胞。
S91 Cells;背景说明:黑色素瘤;雄性;DBA;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:EFM192 Cells、Walker-256 Cells、MDAMB134 Cells
SaOS-2 Cells;背景说明:该细胞是FoghJ和TrempeG分离和鉴定的众多人类肿瘤细胞系中的一种;该细胞来自一位11岁的白人女性的骨肉瘤组织。患者经过放疗以及甲喋呤、阿霉素、长春新碱、环磷酰胺和aramycin-C等多种药物治疗。该细胞在免疫抑制小鼠中不致瘤,细胞表达表皮生长因子EGF受体、转化生长因子β(1型和2型)受体。;传代方法:1:2-1:4传代;每周1-2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;多角形;相关产品有:A2058 Cells、HO8910PM Cells、LNCaP-FGC Cells
Duke University 4475 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2—3次;生长特性:悬浮,多细胞聚集;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:SUM-190PT Cells、EM3 Cells、CMT64 Cells
┈订┈购┈热┈线:1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q:3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1;
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产品包装形式:复苏细胞:T25培养瓶(一瓶)或冻存细胞:1ml冻存管(两支)
来源说明:细胞主要来源ATCC、DSMZ等细胞库
物种来源:Human\Mouse\Rat\Others
Radiation Effects Research Foundation-Lung Cancer-MS Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:OCLY8 Cells、HCC-15 Cells、HPAF Cells
8E4 [Mouse hybridoma against ouabain] Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BL-6 Cells;背景说明:黑色素瘤;雄性;C57BL/6;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CAL62 Cells、Hs729 Cells、HemECs Cells
B16/F1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:H345 Cells、HEK293E Cells、NCIH1648 Cells
形态特性:上皮细胞样
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绝大部分细胞消化只要用胰酶润洗一遍即可:吸去胰酶后,残留的那些无法计算体积的附着在细胞表面的微量胰酶在37℃一般不到2min足够消化细胞(绝大部分1min不到)。对于这些细胞原则上不要用胰酶孵育细胞,连续这样传代,对细胞伤害很大。简单的程序是PBS润洗吸去,胰酶润洗吸去,然后37℃消化。什么算是消化好了呢?不需要把细胞全部消化成间隔分布很离散的单个圆形才算消化好了,一般你肉眼观察贴壁细胞层,只要能移动了,多半呈沙状移动,其实已经是可以了。一般能移动了,说明细胞与培养基质材料的附着已经消失了,细胞之间的附着也已经消失了,细胞已经独立分布了(虽然没有呈现很广的离散分布)。这个时候应该停止消化,不要等到看到镜下所有细胞都分离得非常好,间隙很大,才停止。细胞系在贴壁的过程中仍然会聚集,这个是贴壁培养的细胞,尤其是肿瘤细胞的一个特性,你可以尝试,准备100%的单个细胞悬液,贴壁后观察细胞,仍然是几个几个细胞聚集在一起。一些悬浮培养细胞也是如此,容易聚集,不要过几个小时就拿出来吹打成单细胞悬液。细胞只要能从基质上脱离下来,即使是成片的(比如Calu-3细胞),吹打不超过20次(一般10次即可),成小规模聚集(10个细胞左右)是正常的,不要再去延长消化时间,等待单细胞悬液出现。比较难消化的细胞:润洗方法5min还不能消化,以结肠癌细胞为例,比如:HCT15、LS411和KM12细胞,胰酶消化,一般10 cm培养皿,一次加入300ul-500ul就足够了。即使这样难消化的细胞,一般不超过5min,即可见细胞成片移动,就应该停止消化。一些正常细胞也会有难消化的时候,比如tsDC细胞,用胰酶孵育,3min左右即可看到成片沙状移动。
┈订┈购┈热┈线:1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q:3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1;
活细胞:通常具有透亮的外观、完整的细胞膜,以及清晰可见的细胞核和细胞质内的细胞器。对于贴壁细胞,活细胞能够牢固地贴附在培养皿或培养瓶上。死细胞:则呈现暗淡无光、细胞膜可能碎裂的状态,且无法有效贴壁(对于贴壁细胞而言)。悬浮细胞死细胞则可能表现出膜碎裂、内容物外泄等现象。不同类型的细胞具有特定的生长形态,如成纤维型细胞呈细长形状并附着在基质上生长,上皮型细胞呈多边形等。观察细胞是否保持其特有的生长形态也是判断细胞状态的重要依据。细胞培养员应及时记录细胞培养过程中的关键数据,包括细胞形态、染色结果、生长速度等。建立完善的数据记录系统,有助于追踪细胞状态的变化,并为后续分析提供依据。
Clone 15 HL-60 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:维持细胞浓度在1×105-1×106/ml,每2-3天换液1次。;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:Hs-578Bst Cells、CW-2 Cells、KU-19-19 Cells
MT4 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;圆形;相关产品有:B6Tert-1 Cells、XWLC-05 Cells、MRC-5 Cells
HPDLF Cells;背景说明:牙周膜;成纤维 Cells;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HCC2935 Cells、MLO-Y4 Cells、J774 A.1 Cells
F-81 Cells;背景说明:肾;自发永生;雌性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:BIC Cells、WM266 Cells、X63 Cells
MDA-MB 361 Cells;背景说明:该细胞源自40岁女性乳腺癌的脑转移组织。;传代方法: 1:2—1:6传代,每周换液2—3次;生长特性:松散贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:Roswell Park Memorial Institute 6666 Cells、HUASMC Cells、SF-126 Cells
FU-OV-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCIH526 Cells、MDA-MB-231-GFP Cells、U-CH1 Cells
Hs 294T Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代,2-3天换液1次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:混合星状和多边形;相关产品有:NTERA-2 clone D1 Cells、OVCAR.5 Cells、CHL Cells
H2172 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:6传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:alphaTC clone 6 Cells、Med 341 Cells、MKN74 Cells
HuH-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NIH:OVCAR-8 Cells、DHL10 Cells、NCI-H2291 Cells
A375.S2 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:DMS-153 Cells、NH6 Cells、NOZAWA Cells
3T3NIH Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LX-2 Cells、HCC1395 Cells、OV1-P Cells
G-292 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:U-CH1 Cells、NCTC clone 1469 Cells、H-647 Cells
RPMI no 8226 Cells;背景说明:来源于一位61岁的男性浆细胞瘤患者;可产生免疫球蛋白轻链,未检测到重链。;传代方法:按1:2传代,5-6小时可以看到细胞分裂;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:NCIH82 Cells、KYSE-450 Cells、ARH77 Cells
RWPE1 Cells;背景说明:肿瘤抑制基因: p53 + [PubMed: 9214605] pRB + [PubMed: 9214605] 一位正常男性前列腺组织切片的周围区域的上皮细胞用单拷贝的人乳头瘤病毒的18(HPV-18)进行转化,建立了RWPE-1 (ATCC CRL-11609) 细胞株 [PubMed: 9214605]. 在三维Matrigel培养时,在雄激素作用下,RWPE-1细胞形成腺胞并向培养基中分泌PSA。[PubMed: 11170142]. 当与Matrigel或基质细胞混合注射雄性裸鼠时,RWPE-1细胞也能形成腺胞[PubMed: 11304724] 并产生PSA。 来源于RWPE-1的细胞再用Kirstin鼠类肿瘤病毒转染Ki-ras基因,建立了能成瘤的RWPE-2细胞株(ATCC CRL-11610) [PubMed: 9214605] 和 RWPE2-W99 (ATCC CRL-2853) 细胞株。 另外,用N--N-(MNU)处理RWPE-1,建立了一系列模拟前列腺癌进程中不同时期的成瘤细胞株。 它们是 WPE1-NA22 (ATCC CRL-2849), WPE1-NB14 (ATCC CRL-2850, WPE1-NB11 (ATCC CRL-2851) 和 WPE1-NB26 (ATCC CRL-2852) 细胞株。 据提供者报道,RWPE-1 细胞株(ATCC CRL-11609)经过检测,乙肝、丙肝、都呈阴性。;传代方法:1:3传代,2-3天传一代。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:Walker-256 Cells、mIMCD3 Cells、P3-X63-Ag8.653 Cells
HSKMC Cells;背景说明:骨骼肌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:C8166-CD4 Cells、MD Anderson-Metastatic Breast-157 Cells、SIRC Cells
RERF-LC-MS Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:NH6 Cells、H-211 Cells、RBL-I Cells
GM-346 Cells;背景说明:皮下结缔组织;自发永生;雄性;C3H/An;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:OVHM Cells、KM H-2 Cells、NBLS Cells
22MA Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Abcam HeLa PHLDA3 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AG24250 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRH154 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XH214 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
C0996 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
D-263MG Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
EC-Adamts5tm1Dgen Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GM04877 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MD Anderson-Metastatic Breast-435 Cells;背景说明:乳腺癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LNCaP-FGC Cells、HOC-1 Cells、CMT-64 Cells
BEAS2B Cells;背景说明:从一位非癌个体的正常人支气管上皮病理切片分离出上皮细胞。这些细胞用腺病毒12-SV40病毒杂交病毒感染并克隆。DEAS-2B细胞保留了对血清反应进行鳞关分化的能力,并有用于筛选诱导或影响分化及致癌的化学或生物制剂。细胞角蛋白及SV40抗原染色阳性。;传代方法:消化3-5分钟。1:2。3天内可长满;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:JOSK-M Cells、MCA 38 Cells、WM-239-A Cells
S.B. Cells;背景说明:急性T淋巴细胞白血病;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:BEL7402 Cells、HEK-293-EBNA Cells、DU 145 Cells
SuDHL 4 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:淋巴母细胞;相关产品有:Evsa T Cells、H-1876 Cells、WTRL1 Cells
EFM192C Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:C3H/10T1/2-clone8 Cells、LS411N Cells、H3255_DA Cells
HCC202 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:NKM1 Cells、WEHI 164 TC Cells、SUDHL16 Cells
HEK-293-H Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LK-2 Cells、Reh Cells、SHG 44 Cells
DMS 153 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Hs852T Cells、CHO Cells、T/G HA VSMC Cells
SKMES Cells;背景说明:源于一位65岁患有肺鳞状细胞癌的白人男性,自转移性胸腔积液分离而来。;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:THLE2 Cells、HcerEpic Cells、hFOB1.19 Cells
U-138MG Cells;背景说明:星形细胞瘤;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NS-20Y Cells、PC-9S1 Cells、HFTF Cells
UACC-893 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:HGC27 Cells、NCIH810 Cells、NB19 Cells
A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
H-929 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:保持细胞密度在5×105—1×106 cells/ml之间,每周换液2—3次;生长特性:悬浮生长 ;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:C3H/10T1/2 CL8 Cells、ZR751 Cells、NCI-H661 Cells
NKL Cells;背景说明:NK细胞淋巴瘤/白血病;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Kobe university Oral Squamous Cell culture-2 Cells、C4-2 B Cells、SW 1222 Cells
CAL85-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:COLO-684 Cells、GM03569D Cells、SGC-7901/DDP Cells
HBVSMC Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CAL-27 Cells、Kelly Cells、OCI AML4 Cells
GM23309 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 MSH6 (-) 1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Stanford University-Diffuse Histiocytic Lymphoma-1 Cells;背景说明:间变性大细胞淋巴瘤;胸腔积液转移;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:A375SM Cells、RL-95-2 Cells、IB-RS-2 Cells
A427 Cells;背景说明:肺腺癌;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CCD 841 CoN Cells、SW 954 Cells、RH-35 Cells
WiDrTC Cells;背景说明:结肠癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SNU-251 Cells、H-1954 Cells、CHO-K1 Cells
BIU-87/Adr Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:OVCA 432 Cells、PF-382 Cells、KYSE50 Cells
Glioma 261 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:A431 Cells、KYSE450 Cells、WM 115 Cells
VM Cub 1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:INS1E Cells、HLEpiC Cells、22Rv1 Cells
MDCK-2 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3传代,3-4天传1次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:Ku812F Cells、HS578T Cells、Swiss/3T3 Cells
Acanthosis Nigricans 3rd attempt-CArcinoma Cells;背景说明:AN3CA细胞建系于1964年。它衍生于子宫内膜癌患者淋巴结转移组织,具有癌细胞的基本特性,能在体外长期传代培养,接种实验动物产生明显肿瘤。但细胞的生物学特性及超微结构尚未深入研究,仅发现该细胞系促黑激素合成为阴性。细胞常用于人子宫内膜癌细胞生物学及其相关特性研究。;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:U251 Cells、SNU1040 Cells、MLFC Cells
HQ00702 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
KDI/20 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MHH-TALL-2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
NLFrGEMCI20 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
RBE4 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Ubigene A-549 CCND3 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
UOK117-5 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Hepa-1aV1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
WM 115 Cells;背景说明:黑色素瘤;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:FU-OV-1 Cells、N-2a Cells、BT325 Cells
U-138-MG Cells;背景说明:星形细胞瘤;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SK-GT-2 Cells、HNSC Cells、RIN-m5F Cells
Hs445 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SK-RC-39 Cells、CAL85-1 Cells、CEM-C1 Cells
EAHY-926 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:TCCPAN2 Cells、RMS13 Cells、RKOAS451 Cells
FAO-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:上皮细胞;相关产品有:LS 174 T Cells、CORL23 Cells、NCI-H2330 Cells
FAO-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:上皮细胞;相关产品有:LS 174 T Cells、CORL23 Cells、NCI-H2330 Cells
Caco-2BBe Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:6—1:10传代,每周换液2次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:SW 954 Cells、SCC-9 Cells、NCI-H2141 Cells
TGBC-11-TKB Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:RPMI7951 Cells、J82 COT Cells、LC-1 sq Cells
AR42J Cells;背景说明:在肾上腺皮质激素刺激下可诱导出外分泌活性,并伴有广泛的内质网重构。;传代方法:消化3-5分钟。1:2。3天内可长满。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:COR-L88 Cells、TI-73 Cells、HeLa S 3 Cells
ASH-3 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:H-1703 Cells、SW756 Cells、NCI-H2342 Cells
Factor Dependent Cell-Paterson 1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:2-3天换液1次;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞;相关产品有:HeLa S-3 Cells、RPMI-8402 Cells、G-Olig2 Cells
Farage Cells;背景说明:Farage细胞源于一名患有弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL)白人女性的活检淋巴组织,由HBen-Bassat建系。经IL-4处理,该细胞CD21,CD22,CD54和CD58表达上调,而CD21,CD22,andCD38表达下调。;传代方法:1:3传代,2-3天传一代;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:NRK clone 52E Cells、NTera2/D1 Cells、H-1522 Cells
TB1 Lu Cells;背景说明:肺;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SK_HEP1 Cells、P3HR-1 Cells、LA-N-1 Cells
A172人胶质母细胞瘤传代细胞种子库|送STR图谱
H2108 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:MES-13 Cells、H-2405 Cells、NCIH69 Cells
Pa17C Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:H-345 Cells、2B4-L Cells、HT 1197.T Cells
STAN250i-622C2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Henrietta Lacks cells Cells;背景说明:HeLa是第一个来自人体组织经连续培养获得的非整倍体上皮样细胞系,它由GeyGO等在1951年从31岁女性黑人的宫颈癌组织建立。经原始组织切片重新观察,Jones等将其诊断为腺癌。已知该细胞系含有人乳头状瘤病毒HPV18序列,需在2级生物安全防护台操作。该细胞角蛋白阳性,p53表达量较低,但表达正常水平的pRB(视网膜母细胞瘤抑制因子)。;传代方法:1:3传代,2-3天换液一次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:IM 9 Cells、OVHM Cells、MOLT16 Cells
Metastatic Variant-522 Cells;背景说明:肺腺癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCI-H2291 Cells、GH 3 Cells、Granta 519 Cells
HEC151 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Monomac-1 Cells、LN-382 Cells、253J Cells
T8 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Lu-65 Cells、SK-SH-SY5Y Cells、RCC23 Cells
HOP-62 Cells;背景说明:肺癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LK2 Cells、HUTU80 Cells、T24 Cells
HT 1080 Cells;背景说明:该细胞源自一名35岁患有纤维肉瘤的白人男性的结缔组织;ras+。;传代方法:1:4-1:8传代;2-3天换液1次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:KG1A Cells、SKNBE(2) Cells、RMG-1 Cells
DMS114 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代;每周换液2次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LL/2 Cells、Nb 2 Cells、HCC-9204 Cells
B-104 Cells;背景说明:神经母细胞瘤;BDIX;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:COLO-320DM Cells、SaOS Cells、RMS 13 Cells
HECCL-1 Cells;背景说明:子宫内膜癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:K422 Cells、OK Cells、H-1694 Cells
ECC 10 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:LC1-Sq Cells、SUPB15 Cells、DHL5 Cells
Hs739T Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2—1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:混合型;相关产品有:OCI-Ly 7 Cells、RPMI 7951 Cells、Hs 274 Cells
KPL-1 Cells;背景说明:浸润性导管癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:GM2219C Cells、X63-Ag8 Cells、D-324 Med Cells
RCC-10RGB Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:VP 229 Cells、McA-RH 7777 Cells、HeLa 229 Cells
CALU1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:消化10分钟。1:2。3-4天长满;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:H3255 Cells、Colo205 Cells、IAR-20 Cells
BayGenomics ES cell line CSH383 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRY128 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Beta-LG MAb 63 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
KM3955 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
PCRP-ZSCAN22-1A12 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
P2A8(6) Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
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"PubMed=212188
Todaro G.J., De Larco J.E.
Growth factors produced by sarcoma virus-transformed cells.
Cancer Res. 38:4147-4154(1978)
PubMed=450131; DOI=10.1038/279797a0
Day R.S. 3rd, Ziolkowski C.H.J.
Human brain tumour cell strains with deficient host-cell reactivation of N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine-damaged adenovirus 5.
Nature 279:797-799(1979)
PubMed=6256643; DOI=10.1038/288724a0
Day R.S. 3rd, Ziolkowski C.H.J., Scudiero D.A., Meyer S.A., Lubiniecki A.S., Girardi A.J., Galloway S.M., Bynum G.D.
Defective repair of alkylated DNA by human tumour and SV40-transformed human cell strains.
Nature 288:724-727(1980)
PubMed=6260907; DOI=10.1097/00005072-198105000-00001
Bigner D.D., Bigner S.H., Ponten J., Westermark B., Mahaley M.S. Jr., Ruoslahti E., Herschman H.R., Eng L.F., Wikstrand C.J.
Heterogeneity of genotypic and phenotypic characteristics of fifteen permanent cell lines derived from human gliomas.
J. Neuropathol. Exp. Neurol. 40:201-229(1981)
PubMed=6954533; DOI=10.1073/pnas.79.7.2194; PMCID=PMC346157
Westin E.H., Gallo R.C., Arya S.K., Eva A., Souza L.M., Baluda M.A., Aaronson S.A., Wong-Staal F.
Differential expression of the amv gene in human hematopoietic cells.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 79:2194-2198(1982)
PubMed=6220172
Dracopoli N.C., Fogh J.
Polymorphic enzyme analysis of cultured human tumor cell lines.
J. Natl. Cancer Inst. 70:469-476(1983)
PubMed=6652614; DOI=10.1016/0165-4608(83)90091-2
Bigner S.H., Mark J., Bigner D.D.
Chromosomal composition of four permanent cultured cell lines derived from human gliomas.
Cancer Genet. Cytogenet. 10:335-349(1983)
PubMed=6825208; DOI=10.1093/carcin/4.2.199
Yarosh D.B., Foote R.S., Mitra S., Day R.S. 3rd
Repair of O6-methylguanine in DNA by demethylation is lacking in Mer- human tumor cell strains.
Carcinogenesis 4:199-205(1983)
PubMed=3518877; DOI=10.3109/07357908609038260
Fogh J.
Human tumor lines for cancer research.
Cancer Invest. 4:157-184(1986)
PubMed=3759084; DOI=10.1007/BF00278796
Henn W., Blin N., Zang K.-D.
Polysomy of chromosome 7 is correlated with overexpression of the erbB oncogene in human glioblastoma cell lines.
Hum. Genet. 74:104-106(1986)
PubMed=3675803
Bigner S.H., Bjerkvig R., Laerum O.D., Muhlbaier L.H., Bigner D.D.
DNA content and chromosomes in permanent cultured cell lines derived from malignant human gliomas.
Anal. Quant. Cytol. Histol. 9:435-444(1987)
PubMed=1385192; DOI=10.1016/0531-5565(92)90007-m
Fleming T.P., Matsui T., Aaronson S.A.
Platelet-derived growth factor (PDGF) receptor activation in cell transformation and human malignancy.
Exp. Gerontol. 27:523-532(1992)
DOI=10.1016/B978-0-12-333530-2.50005-8
Nister M., Westermark B.
Human glioma cell lines.
(In book chapter) Atlas of human tumor cell lines; Hay R.J., Park J.-G., Gazdar A.F. (eds.); pp.17-42; Academic Press; New York; USA (1994)
PubMed=7523863; DOI=10.1128/mcb.14.11.7604-7610.1994; PMCID=PMC359296
Pomykala H.M., Bohlander S.K., Broeker P.L., Olopade O.I., Diaz M.O.
Breakpoint junctions of chromosome 9p deletions in two human glioma cell lines.
Mol. Cell. Biol. 14:7604-7610(1994)
PubMed=9090379; DOI=10.1038/ng0497-356
Steck P.A., Pershouse M.A., Jasser S.A., Yung W.-K.A., Lin H., Ligon A.H., Langford L.A., Baumgard M.L., Hattier T., Davis T., Frye C., Hu R., Swedlund B., Teng D.H.-F., Tavtigian S.V.
Identification of a candidate tumour suppressor gene, MMAC1, at chromosome 10q23.3 that is mutated in multiple advanced cancers.
Nat. Genet. 15:356-362(1997)
PubMed=9220028; DOI=10.1016/S0303-7207(97)00080-4
Sharif T.R., Luo W., Sharif M.
Functional expression of bombesin receptor in most adult and pediatric human glioblastoma cell lines; role in mitogenesis and in stimulating the mitogen-activated protein kinase pathway.
Mol. Cell. Endocrinol. 130:119-130(1997)
PubMed=9290701; DOI=10.1002/(SICI)1098-2744(199708)19:4<243::AID-MC5>3.0.CO;2-D
Jia L.-Q., Osada M., Ishioka C., Gamo M., Ikawa S., Suzuki T., Shimodaira H., Niitani T., Kudo T., Akiyama M., Kimura N., Matsuo M., Mizusawa H., Tanaka N., Koyama H., Namba M., Kanamaru R., Kuroki T.
Screening the p53 status of human cell lines using a yeast functional assay.
Mol. Carcinog. 19:243-253(1997)
PubMed=9842975; DOI=10.1002/(SICI)1097-0215(19981218)79:6<640::AID-IJC15>3.0.CO;2-z
Weller M., Rieger J., Grimmel C., Van Meir E.G., De Tribolet N., Krajewski S., Reed J.C., von Deimling A., Dichgans J.
Predicting chemoresistance in human malignant glioma cells: the role of molecular genetic analyses.
Int. J. Cancer 79:640-644(1998)
DOI=10.1007/0-306-46861-1_11
Ali-Osman F.
Brain tumors.
(In book chapter) Human cell culture. Vol. 2. Cancer cell lines part 2; Masters J.R.W., Palsson B.O. (eds.); pp.167-184; Kluwer Academic Publishers; New York; USA (1999)
PubMed=10402232; DOI=10.3892/ijo.15.2.237
Sharif T.R., Sharif M.
Overexpression of protein kinase C epsilon in astroglial brain tumor derived cell lines and primary tumor samples.
Int. J. Oncol. 15:237-243(1999)
PubMed=10416987; DOI=10.1111/j.1750-3639.1999.tb00536.x; PMCID=PMC8098486
Ishii N., Maier D., Merlo A., Tada M., Sawamura Y., Diserens A.-C., Van Meir E.G.
Frequent co-alterations of TP53, p16/CDKN2A, p14ARF, PTEN tumor suppressor genes in human glioma cell lines.
Brain Pathol. 9:469-479(1999)
PubMed=10698499; DOI=10.1038/sj.onc.1203409
Ciesielski M.J., Fenstermaker R.A.
Oncogenic epidermal growth factor receptor mutants with tandem duplication: gene structure and effects on receptor function.
Oncogene 19:810-820(2000)
PubMed=11351043; DOI=10.1038/labinvest.3780280
Hui A.B.-Y., Lo K.-W., Yin X.-L., Poon W.-S., Ng H.-K.
Detection of multiple gene amplifications in glioblastoma multiforme using array-based comparative genomic hybridization.
Lab. Invest. 81:717-723(2001)
PubMed=14614447; DOI=10.1038/sj.onc.1207198
Wischhusen J., Naumann U., Ohgaki H., Rastinejad F., Weller M.
CP-31398, a novel p53-stabilizing agent, induces p53-dependent and p53-independent glioma cell death.
Oncogene 22:8233-8245(2003)
PubMed=14655754; DOI=10.1111/j.1750-3639.2003.tb00479.x; PMCID=PMC8095903
Bahr O., Rieger J., Duffner F., Meyermann R., Weller M., Wick W.
P-glycoprotein and multidrug resistance-associated protein mediate specific patterns of multidrug resistance in malignant glioma cell lines, but not in primary glioma cells.
Brain Pathol. 13:482-494(2003)
PubMed=15900046; DOI=10.1093/jnci/dji133
Mashima T., Oh-hara T., Sato S., Mochizuki M., Sugimoto Y., Yamazaki K., Hamada J.-i., Tada M., Moriuchi T., Ishikawa Y., Kato Y., Tomoda H., Yamori T., Tsuruo T.
p53-defective tumors with a functional apoptosome-mediated pathway: a new therapeutic target.
J. Natl. Cancer Inst. 97:765-777(2005)
PubMed=16232199; DOI=10.1111/j.1349-7006.2005.00099.x; PMCID=PMC11159392
Saigusa K., Hashimoto N., Tsuda H., Yokoi S., Maruno M., Yoshimine T., Aoyagi M., Ohno K., Imoto I., Inazawa J.
Overexpressed Skp2 within 5p amplification detected by array-based comparative genomic hybridization is associated with poor prognosis of glioblastomas.
Cancer Sci. 96:676-683(2005)
PubMed=16697959; DOI=10.1016/j.ccr.2006.03.030
Lee J., Kotliarova S., Kotliarov Y., Li A.-G., Su Q., Donin N.M., Pastorino S., Purow B.W., Christopher N., Zhang W., Park J.K., Fine H.A.
Tumor stem cells derived from glioblastomas cultured in bFGF and EGF more closely mirror the phenotype and genotype of primary tumors than do serum-cultured cell lines.
Cancer Cell 9:391-403(2006)
PubMed=17254797; DOI=10.1016/j.biologicals.2006.10.001
Azari S., Ahmadi N., Jeddi-Tehrani M., Shokri F.
Profiling and authentication of human cell lines using short tandem repeat (STR) loci: report from the National Cell Bank of Iran.
Biologicals 35:195-202(2007)
PubMed=17595512; DOI=10.1159/000104150
Rieger J., Frank B., Weller M., Wick W.
Mechanisms of resistance of human glioma cells to Apo2 ligand/TNF-related apoptosis-inducing ligand.
Cell. Physiol. Biochem. 20:23-34(2007)
PubMed=19365568; DOI=10.1371/journal.pone.0005209; PMCID=PMC2666263
Bax D.A., Little S.E., Gaspar N., Perryman L., Marshall L., Viana-Pereira M., Jones T.A., Williams R.D., Grigoriadis A., Vassal G., Workman P., Sheer D., Reis R.M., Pearson A.D.J., Hargrave D., Jones C.
Molecular and phenotypic characterisation of paediatric glioma cell lines as models for preclinical drug development.
PLoS ONE 4:E5209-E5209(2009)
PubMed=19435942; DOI=10.1215/15228517-2009-025; PMCID=PMC2743214
Ichimura K., Pearson D.M., Kocialkowski S., Backlund L.M., Chan R., Jones D.T.W., Collins V.P.
IDH1 mutations are present in the majority of common adult gliomas but rare in primary glioblastomas.
Neuro-oncol. 11:341-347(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=21406405; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-3112
Grzmil M., Morin P. Jr., Lino M.M., Merlo A., Frank S., Wang Y.-H., Moncayo G., Hemmings B.A.
MAP kinase-interacting kinase 1 regulates SMAD2-dependent TGF-beta signaling pathway in human glioblastoma.
Cancer Res. 71:2392-2402(2011)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
PubMed=22570425; DOI=10.1093/neuonc/nos072; PMCID=PMC3367844
Bady P., Diserens A.-C., Castella V., Kalt S., Heinimann K., Hamou M.-F., Delorenzi M., Hegi M.E.
DNA fingerprinting of glioma cell lines and considerations on similarity measurements.
Neuro-oncol. 14:701-711(2012)
PubMed=23637631; DOI=10.1371/journal.pgen.1003464; PMCID=PMC3636093
Giacomini C.P., Sun S., Varma S., Shain A.H., Giacomini M.M., Balagtas J.M.S., Sweeney R.T., Lai E., Del Vecchio C.A., Forster A.D., Clarke N., Montgomery K.D., Zhu S., Wong A.J., van de Rijn M., West R.B., Pollack J.R.
Breakpoint analysis of transcriptional and genomic profiles uncovers novel gene fusions spanning multiple human cancer types.
PLoS Genet. 9:E1003464-E1003464(2013)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=30188626; DOI=10.1134/S1990519X16050072
Kiseleva L.N., Kartashev A.V., Vartanyan N.L., Pinevich A.A., Samoylovich M.P.
Characteristics of A172 and T98G cell lines.
Tsitologiia 58:349-355(2016)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)"
Todaro G.J., De Larco J.E.
Growth factors produced by sarcoma virus-transformed cells.
Cancer Res. 38:4147-4154(1978)
PubMed=450131; DOI=10.1038/279797a0
Day R.S. 3rd, Ziolkowski C.H.J.
Human brain tumour cell strains with deficient host-cell reactivation of N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine-damaged adenovirus 5.
Nature 279:797-799(1979)
PubMed=6256643; DOI=10.1038/288724a0
Day R.S. 3rd, Ziolkowski C.H.J., Scudiero D.A., Meyer S.A., Lubiniecki A.S., Girardi A.J., Galloway S.M., Bynum G.D.
Defective repair of alkylated DNA by human tumour and SV40-transformed human cell strains.
Nature 288:724-727(1980)
PubMed=6260907; DOI=10.1097/00005072-198105000-00001
Bigner D.D., Bigner S.H., Ponten J., Westermark B., Mahaley M.S. Jr., Ruoslahti E., Herschman H.R., Eng L.F., Wikstrand C.J.
Heterogeneity of genotypic and phenotypic characteristics of fifteen permanent cell lines derived from human gliomas.
J. Neuropathol. Exp. Neurol. 40:201-229(1981)
PubMed=6954533; DOI=10.1073/pnas.79.7.2194; PMCID=PMC346157
Westin E.H., Gallo R.C., Arya S.K., Eva A., Souza L.M., Baluda M.A., Aaronson S.A., Wong-Staal F.
Differential expression of the amv gene in human hematopoietic cells.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 79:2194-2198(1982)
PubMed=6220172
Dracopoli N.C., Fogh J.
Polymorphic enzyme analysis of cultured human tumor cell lines.
J. Natl. Cancer Inst. 70:469-476(1983)
PubMed=6652614; DOI=10.1016/0165-4608(83)90091-2
Bigner S.H., Mark J., Bigner D.D.
Chromosomal composition of four permanent cultured cell lines derived from human gliomas.
Cancer Genet. Cytogenet. 10:335-349(1983)
PubMed=6825208; DOI=10.1093/carcin/4.2.199
Yarosh D.B., Foote R.S., Mitra S., Day R.S. 3rd
Repair of O6-methylguanine in DNA by demethylation is lacking in Mer- human tumor cell strains.
Carcinogenesis 4:199-205(1983)
PubMed=3518877; DOI=10.3109/07357908609038260
Fogh J.
Human tumor lines for cancer research.
Cancer Invest. 4:157-184(1986)
PubMed=3759084; DOI=10.1007/BF00278796
Henn W., Blin N., Zang K.-D.
Polysomy of chromosome 7 is correlated with overexpression of the erbB oncogene in human glioblastoma cell lines.
Hum. Genet. 74:104-106(1986)
PubMed=3675803
Bigner S.H., Bjerkvig R., Laerum O.D., Muhlbaier L.H., Bigner D.D.
DNA content and chromosomes in permanent cultured cell lines derived from malignant human gliomas.
Anal. Quant. Cytol. Histol. 9:435-444(1987)
PubMed=1385192; DOI=10.1016/0531-5565(92)90007-m
Fleming T.P., Matsui T., Aaronson S.A.
Platelet-derived growth factor (PDGF) receptor activation in cell transformation and human malignancy.
Exp. Gerontol. 27:523-532(1992)
DOI=10.1016/B978-0-12-333530-2.50005-8
Nister M., Westermark B.
Human glioma cell lines.
(In book chapter) Atlas of human tumor cell lines; Hay R.J., Park J.-G., Gazdar A.F. (eds.); pp.17-42; Academic Press; New York; USA (1994)
PubMed=7523863; DOI=10.1128/mcb.14.11.7604-7610.1994; PMCID=PMC359296
Pomykala H.M., Bohlander S.K., Broeker P.L., Olopade O.I., Diaz M.O.
Breakpoint junctions of chromosome 9p deletions in two human glioma cell lines.
Mol. Cell. Biol. 14:7604-7610(1994)
PubMed=9090379; DOI=10.1038/ng0497-356
Steck P.A., Pershouse M.A., Jasser S.A., Yung W.-K.A., Lin H., Ligon A.H., Langford L.A., Baumgard M.L., Hattier T., Davis T., Frye C., Hu R., Swedlund B., Teng D.H.-F., Tavtigian S.V.
Identification of a candidate tumour suppressor gene, MMAC1, at chromosome 10q23.3 that is mutated in multiple advanced cancers.
Nat. Genet. 15:356-362(1997)
PubMed=9220028; DOI=10.1016/S0303-7207(97)00080-4
Sharif T.R., Luo W., Sharif M.
Functional expression of bombesin receptor in most adult and pediatric human glioblastoma cell lines; role in mitogenesis and in stimulating the mitogen-activated protein kinase pathway.
Mol. Cell. Endocrinol. 130:119-130(1997)
PubMed=9290701; DOI=10.1002/(SICI)1098-2744(199708)19:4<243::AID-MC5>3.0.CO;2-D
Jia L.-Q., Osada M., Ishioka C., Gamo M., Ikawa S., Suzuki T., Shimodaira H., Niitani T., Kudo T., Akiyama M., Kimura N., Matsuo M., Mizusawa H., Tanaka N., Koyama H., Namba M., Kanamaru R., Kuroki T.
Screening the p53 status of human cell lines using a yeast functional assay.
Mol. Carcinog. 19:243-253(1997)
PubMed=9842975; DOI=10.1002/(SICI)1097-0215(19981218)79:6<640::AID-IJC15>3.0.CO;2-z
Weller M., Rieger J., Grimmel C., Van Meir E.G., De Tribolet N., Krajewski S., Reed J.C., von Deimling A., Dichgans J.
Predicting chemoresistance in human malignant glioma cells: the role of molecular genetic analyses.
Int. J. Cancer 79:640-644(1998)
DOI=10.1007/0-306-46861-1_11
Ali-Osman F.
Brain tumors.
(In book chapter) Human cell culture. Vol. 2. Cancer cell lines part 2; Masters J.R.W., Palsson B.O. (eds.); pp.167-184; Kluwer Academic Publishers; New York; USA (1999)
PubMed=10402232; DOI=10.3892/ijo.15.2.237
Sharif T.R., Sharif M.
Overexpression of protein kinase C epsilon in astroglial brain tumor derived cell lines and primary tumor samples.
Int. J. Oncol. 15:237-243(1999)
PubMed=10416987; DOI=10.1111/j.1750-3639.1999.tb00536.x; PMCID=PMC8098486
Ishii N., Maier D., Merlo A., Tada M., Sawamura Y., Diserens A.-C., Van Meir E.G.
Frequent co-alterations of TP53, p16/CDKN2A, p14ARF, PTEN tumor suppressor genes in human glioma cell lines.
Brain Pathol. 9:469-479(1999)
PubMed=10698499; DOI=10.1038/sj.onc.1203409
Ciesielski M.J., Fenstermaker R.A.
Oncogenic epidermal growth factor receptor mutants with tandem duplication: gene structure and effects on receptor function.
Oncogene 19:810-820(2000)
PubMed=11351043; DOI=10.1038/labinvest.3780280
Hui A.B.-Y., Lo K.-W., Yin X.-L., Poon W.-S., Ng H.-K.
Detection of multiple gene amplifications in glioblastoma multiforme using array-based comparative genomic hybridization.
Lab. Invest. 81:717-723(2001)
PubMed=14614447; DOI=10.1038/sj.onc.1207198
Wischhusen J., Naumann U., Ohgaki H., Rastinejad F., Weller M.
CP-31398, a novel p53-stabilizing agent, induces p53-dependent and p53-independent glioma cell death.
Oncogene 22:8233-8245(2003)
PubMed=14655754; DOI=10.1111/j.1750-3639.2003.tb00479.x; PMCID=PMC8095903
Bahr O., Rieger J., Duffner F., Meyermann R., Weller M., Wick W.
P-glycoprotein and multidrug resistance-associated protein mediate specific patterns of multidrug resistance in malignant glioma cell lines, but not in primary glioma cells.
Brain Pathol. 13:482-494(2003)
PubMed=15900046; DOI=10.1093/jnci/dji133
Mashima T., Oh-hara T., Sato S., Mochizuki M., Sugimoto Y., Yamazaki K., Hamada J.-i., Tada M., Moriuchi T., Ishikawa Y., Kato Y., Tomoda H., Yamori T., Tsuruo T.
p53-defective tumors with a functional apoptosome-mediated pathway: a new therapeutic target.
J. Natl. Cancer Inst. 97:765-777(2005)
PubMed=16232199; DOI=10.1111/j.1349-7006.2005.00099.x; PMCID=PMC11159392
Saigusa K., Hashimoto N., Tsuda H., Yokoi S., Maruno M., Yoshimine T., Aoyagi M., Ohno K., Imoto I., Inazawa J.
Overexpressed Skp2 within 5p amplification detected by array-based comparative genomic hybridization is associated with poor prognosis of glioblastomas.
Cancer Sci. 96:676-683(2005)
PubMed=16697959; DOI=10.1016/j.ccr.2006.03.030
Lee J., Kotliarova S., Kotliarov Y., Li A.-G., Su Q., Donin N.M., Pastorino S., Purow B.W., Christopher N., Zhang W., Park J.K., Fine H.A.
Tumor stem cells derived from glioblastomas cultured in bFGF and EGF more closely mirror the phenotype and genotype of primary tumors than do serum-cultured cell lines.
Cancer Cell 9:391-403(2006)
PubMed=17254797; DOI=10.1016/j.biologicals.2006.10.001
Azari S., Ahmadi N., Jeddi-Tehrani M., Shokri F.
Profiling and authentication of human cell lines using short tandem repeat (STR) loci: report from the National Cell Bank of Iran.
Biologicals 35:195-202(2007)
PubMed=17595512; DOI=10.1159/000104150
Rieger J., Frank B., Weller M., Wick W.
Mechanisms of resistance of human glioma cells to Apo2 ligand/TNF-related apoptosis-inducing ligand.
Cell. Physiol. Biochem. 20:23-34(2007)
PubMed=19365568; DOI=10.1371/journal.pone.0005209; PMCID=PMC2666263
Bax D.A., Little S.E., Gaspar N., Perryman L., Marshall L., Viana-Pereira M., Jones T.A., Williams R.D., Grigoriadis A., Vassal G., Workman P., Sheer D., Reis R.M., Pearson A.D.J., Hargrave D., Jones C.
Molecular and phenotypic characterisation of paediatric glioma cell lines as models for preclinical drug development.
PLoS ONE 4:E5209-E5209(2009)
PubMed=19435942; DOI=10.1215/15228517-2009-025; PMCID=PMC2743214
Ichimura K., Pearson D.M., Kocialkowski S., Backlund L.M., Chan R., Jones D.T.W., Collins V.P.
IDH1 mutations are present in the majority of common adult gliomas but rare in primary glioblastomas.
Neuro-oncol. 11:341-347(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=21406405; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-3112
Grzmil M., Morin P. Jr., Lino M.M., Merlo A., Frank S., Wang Y.-H., Moncayo G., Hemmings B.A.
MAP kinase-interacting kinase 1 regulates SMAD2-dependent TGF-beta signaling pathway in human glioblastoma.
Cancer Res. 71:2392-2402(2011)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
PubMed=22570425; DOI=10.1093/neuonc/nos072; PMCID=PMC3367844
Bady P., Diserens A.-C., Castella V., Kalt S., Heinimann K., Hamou M.-F., Delorenzi M., Hegi M.E.
DNA fingerprinting of glioma cell lines and considerations on similarity measurements.
Neuro-oncol. 14:701-711(2012)
PubMed=23637631; DOI=10.1371/journal.pgen.1003464; PMCID=PMC3636093
Giacomini C.P., Sun S., Varma S., Shain A.H., Giacomini M.M., Balagtas J.M.S., Sweeney R.T., Lai E., Del Vecchio C.A., Forster A.D., Clarke N., Montgomery K.D., Zhu S., Wong A.J., van de Rijn M., West R.B., Pollack J.R.
Breakpoint analysis of transcriptional and genomic profiles uncovers novel gene fusions spanning multiple human cancer types.
PLoS Genet. 9:E1003464-E1003464(2013)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=30188626; DOI=10.1134/S1990519X16050072
Kiseleva L.N., Kartashev A.V., Vartanyan N.L., Pinevich A.A., Samoylovich M.P.
Characteristics of A172 and T98G cell lines.
Tsitologiia 58:349-355(2016)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)"
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