AS 1842856,Foxo1抑制剂，836620-48-

高效液相色谱法测定生物样本中头孢噻肟和舒巴坦的浓度

）3个浓度的舒巴坦尿液样品同法放置，按前述方法测定舒巴坦浓度变化，血浆中RSD分别为10.33%, 4.73%和8.80%，尿液中RSD分别为0.67%, 0.66%和0.76%. 表明舒巴坦血浆和尿液样品置于-20℃冰箱3 d内稳定. 　　3讨论 　　我们采用HPLC法测定生物样本中头孢噻肟和舒巴坦浓度,同文献报道的紫外法［3］、微生物法［4-5］和HPLC法［6-7］相比较,样品预处理简单,测定时间短,方法准确精密,稳定性高,适合药代动力学和临床药物浓度监测应用.   　　

【资源】蛋白纯化经验指南（）

时你们一般用多少柱床体积？10X够了吗？ 一般也就3-5个床体积吧，离子交换需要平衡体积大点也，10X足够了 101) 有个关于胰岛素精纯化的问题想向你请教，我已取得95%纯度样品。但杂质大于1%，进一步纯化，用什么柱子，具体操作又怎样做呢，谢谢赐教。 我知道，我好象回复过，你用反相硅胶10um的柱子1.0X25cm或者2.2X25cm的柱子做制备，这样可以达到99%以上的纯度，别的方法很难做到你需要的纯度，此外胰岛素也可以用等电点沉淀的办法去掉一些杂质。 HPLC制备你可以参考

蛋白纯化经验指南

沉淀，我用0.5%CHAPS助溶可勉强溶解部分，目的蛋白疏水性比较强。既然是疏水性很强你可以加点甘油或者乙二醇降低极性，这样溶解就会好得多，此外你也直接加2%的PEG这样也降低极性，同时保护你的蛋白，你再做纯化就可以了，我以前遇到这样的蛋白是用10%的乙醇加3-5%的PEG5000，这样的情况下蛋白还是活性回收率很高，我觉得那些表面活性剂能不用还是不用的好，你失去活性你可以监测一下提取，纯化，酶切到底哪里失去了活性，这样更容易解决你的问题。还有注意缓冲液PH值，看看改变它对溶解度有没有影响。蛋白