犬源性成分（Canine）核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)

【产品名称】
商品名称：犬源性成分（Canine）核酸检测试剂盒（荧光 PCR 法）
Name    ：Canine derived ingredients Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】25T/盒、50T/盒
【预期用途】 在动物产品原料和加工产品中，经常出现成分的掺假造假和无意污染现象，为确保加工产品的真实性，国   内外研究人员建立了犬源性成分的检测方法[1-3]。 本试剂盒适用于动物组织以及食品、饲料等样本中犬源性成分的检测。
【检验原理】 本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术，设计一对犬源性成分基因保守区特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光 PCR 技术对犬源性成分基因保守区的 DNA 进行体外扩增检测，从而达到快速检测之目的； 用于科研实验中对可疑感染病料的病原学检测。
【试剂组成】 包装规格    25T/盒    50T/盒 Canine 反应液    500μL×1 管    500μL×2 管 酶液    25μL×1 管    50μL×1 管 Canine 阳性质控品    250μL ×1 管    250μL ×1 管 阴性质控品    250μL ×1 管    250μL ×1 管 说明：不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
【储存条件及有效期】 -20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次，有效期 12 个月。
【适用仪器】 ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】 取动物组织及其制品、食品或饲料约 1g。
【保存和运输】 采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h；若需长期保存，应放置-70℃以下保存，冻融不超过 3 次。
【使用方法】
1.    样品处理（样本处理区） 1.1    样本前处理 取动物组织及其制品、食品或饲料约 1g，手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中，8000rpm 离心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中。 1.2    核酸提取 推荐采用上海烜雅生物科技有限公司生产的核酸提取或纯化试剂（磁珠法或离心柱法）进行核酸提取，   请按照试剂说明书进行操作。
2.    试剂配制（试剂准备区） 根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；样品每满 10 份，多配制 1 份)，每测试反应体系配制如下表： 试剂    Canine 反应液    酶液 用量    19μL    1μL 将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中，20μL/管。
3.    加样（样本处理区） 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀， 短暂离心。
4.    PCR 扩增（核酸扩增区）
4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内；
4.2    设置好通道、样品信息，反应体系设置为 25μL；荧光通道选择： 检测通道（Reporter Dye）FAM， 淬灭通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光，选择 None 即可。
4.3    推荐循环参数设置： 步骤    循环数    温度    时间    收集荧光信号 1    1 cycle    95℃    10min    否 2    40 cycles    95℃    15sec    否         60℃    30sec    是
5.    结果分析判定
5.1    结果分析条件设定（请参照各仪器使用说明书进行设置，以分析 ABI7500 仪器为例） 反应结束后自动保存结果，根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用户可根据实际情况自行调整，Start 值可设在 3～15、End 值可设在 5～20，使阈值线位于扩增曲线指数期，阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线），点击 Analyze 自动获得分析结果。
5.2    结果判断 阳性：检测通道 Ct 值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线； 阴性：样本检测结果无 Ct 值，且无特异性扩增曲线； 可疑：样本检测结果 35 5.3    质控标准 阴性质控品：无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示； 阳性质控品：扩增曲线有明显指数增长期，且 Ct 值≤32； 以上条件应同时满足，否则实验视为无效。
6.    检测方法的局限性
1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；
2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；
3.    阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；
4.    病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果；
5.    不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；
6.    试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果；
7.    本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
【注意事项】
1.    所有操作严格按照说明书进行；
2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化，完全混匀并短暂离心；
3.    反应液应避光保存；
4.    反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；
5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；
6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；
7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；
8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
【参考文献】 [1]    国家质量监督检验检验总局. GB/T 21105-2007 动物源性饲料中狗源性成分定性检测方法-PCR 方方法[S]. 北京:中国标准出版社, 2007. [2]    国家质量监督检验检验总局. SB/T 10923-2012 肉及肉制品中动物源性成分的测定 实时荧光PCR 法[S]. 北京: 中国标准出版社, 2012. [3]    熊蕊, 郭凤柳, 刘晓慧. 肉制品中犬源性成分PCR 检测方法的建立[J]. 动物医学进展, 2014.