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文献和实验=3.15-3.2(控制缓冲溶液的pH值在此范围是非常重要的,因为吡啶和N,N-二甲基苯胺对pH值非常敏感),用650ml乙腈和350ml缓冲溶液混合来配制流动相,此混合物经孔径为0.45um的过滤器过滤。为了检测流动相配制是否正确,我们将测试混合物注射入一根色谱柱与此混合物在另一批正在使用的流动相中的保留因子作比较。 制备100ml测试混合物,先将65ml乙腈和4mg尿嘧啶,15mg吡啶,40mg苯酚,15mgN,N-二甲基苯胺,30mg4-正丁烷苯甲酸及400mg甲苯混合,超声波处理一会
ml的瓶用10000rpm,30min,4℃。50ml小管的离心效果比500ml的瓶好,如果你的溶液量在300ml以下,还是勤快点,多装几根50ml的小管吧。 (5)过滤 对上清可溶表达的蛋白在收集破菌离心上清后,必须过滤后才能上柱纯化。在园子里常看到有战友说我的柱流速很慢,层析柱压缩等很厉害,柱头有杂质堵了等等,这多数是因为没有进行过滤操作。过滤一般采用真空负压抽滤,可以选择0.8um的膜或双层滤纸过滤。多数层析的要求都是过柱溶液需经过0.45um的膜过滤,但实际上对破菌后的上清液或包涵
0.8um的膜或双层滤纸过滤。多数层析的要求都是过柱溶液需经过0.45um的膜过滤,但实际上对破菌后的上清液或包涵体的溶解上清样,0.45um膜太难过滤了,mission impossible,无法完成操作。所以在实际工作中,我们都是采用双层滤纸或0.8um的膜过滤。在此推荐我用的一套设备组合:millipore wp6122050型台式真空压力两用泵和Sartorius 16201不锈钢过滤器,非广告,好用哦。五、包涵体处理 前面说过对纯化来说,我不赞成包涵体的提法,但为了表述方便还是不妨借用一下
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