超滤管15ml 30kd，替代Millipore【UFC90

影响蛋白超滤的因素以及使用超滤膜的注意事项

允许的情况下，如PES的膜，用毕可以用0.1-0.5M NaOH浸泡，有可能多用几次。 具体millipore的材质，需要和millipore咨询 (七)问题：请问如何选定超滤膜的孔径大小?如果我选择30kd得超滤管，那么我得到的目标蛋白应该在什么范围之内? 那很难说，不同公司的膜孔径标称是存在明显差异的，没有通用标准。 而且，某个蛋白的具体的截留状况和蛋白的浓度、构象、buffer种类、压力、膜材质、是否滤洗等密切相关。 只能说

干货：外泌体研究实操中的常见问题解答

和数量充足，干细胞/原代细胞上清可在提取前采用超滤管（100KD）浓缩 3~5 倍后再提取。 3、使用EPF柱时堵塞如何处理？ 答：过滤柱的孔径在 220nm 左右。如果出现堵塞情况，可以将柱子旋转 180 度再次离心。若上室还有残留液体，需要使用新的 EPF 柱，该柱子可以单独购买（货号 UR90102）。 4、沉淀法的具体原理是什么？ 答：将高亲水性聚合物（聚乙二醇等）添加到含外泌体的溶液中后，外泌体周围的水分子被聚合物束缚，降低了外泌体的溶解度并诱导其随后的沉淀，使外泌体在低速离心下可以很容易

如何获得高质量的细胞上清液外泌体？

的复杂了，更不利于后期的研究了。 第三步初步浓缩（也可省略此步）：是不是在提取干细胞上清外泌体过程中会有看不到沉淀的时候？这时心中就没了谱，下游的检测项目做的更是提心吊胆。因此，在这里给出了通过超滤方法进行浓缩处理的建议。超滤的原理就是利用一定的尺寸大小的滤膜拦住大颗粒物而放过小颗粒物的原理，在离心管中最终呈现上液和下液，我们在根据实验目的各取所需。针对细胞上清液的特点，建议可以使用 10 KD ~ 100 KD 之间的超滤管来进行样品浓缩，外泌体通常是在超滤离心管的上室中，浓缩倍数控制到 5 倍