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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 规格:
10-9151
● 管体:医疗级聚丙烯制成; 平盖:医疗级聚乙烯制成; 塞盖:医疗级聚丙烯制成
● 管体15ml 和50ml 锥形底设计,高透明,预置白色书写区
● 管盖双螺纹设计,增强密封性,易于单手操作
● 平盖设计,盖顶可作为样本信息标记区域
● 无RNase、无DNase
● 伽马射线灭菌,产品安全无菌,无致热源
● 提供架装灭菌包装;提供塑封袋装散装灭菌和非灭菌包装
参数
● 耐受温度范围:-20℃ -121℃(平盖除外)
● 耐受离心力:15ml 离心管:12000G,50ml 离心管:16000G
● 密封性测试:密封程度达到《国际航空运输协会安全标准》要求
| 产品型号 | 容量 | 盖子 | 灭菌 | 包装方式 | 包装规格 |
| 10-9151 |
15ml |
平盖 | 是 | 架装 | 50 套/ 架, 500 套/ 箱 |
| 10-9152 | 15ml | 平盖 | 是 | 袋装 | 25 套/ 袋, 500 套/ 箱 |
| 10-9501 | 50ml | 平盖 | 是 | 架装 | 25 套/ 架, 500 套/ 箱 |
| 10-9502 | 50ml | 平盖 | 是 | 袋装 | 25 套/ 袋, 500 套/ 箱 |
| 10-9815 | 15ml | 平盖 | 否 | 袋装 | 500 套/ 箱 |
| 10-9850 | 50ml | 平盖 | 否 | 袋装 | 500 套/ 箱 |
| 10-0151 | 15ml | 塞盖 | 是 | 架装 | 50 套/ 架, 500 套/ 箱 |
| 10-0152 | 15ml | 塞盖 | 是 | 袋装 | 25 套/ 袋, 500 套/ 箱 |
| 10-0501 | 50ml | 塞盖 | 是 | 架装 | 25 套/ 架, 500 套/ 箱 |
| 10-0502 | 50ml | 塞盖 | 是 | 袋装 | 25 套/ 袋, 500 套/ 箱 |
| 10-0815 | 15ml | 塞盖 | 否 | 袋装 | 500 套/ 箱 |
| 10-0850 | 50ml | 塞盖 | 否 | 袋装 | 500 套/ 箱 |
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文献和实验O 0.06g,加 H2O至 1000mlG1 注:Hank’s液可以高压灭菌。4℃下保存。 3、用手术剪将肝脏剪成小块(1mm2),再用 Hank’s液洗三次,转移至小青霉素瓶中。 4、视组织块量加入 5—6倍的 0.25%胰酶液,37℃中消化 20—40分钟,每隔 5分钟振荡一次,或用吸管吹打一次,使细胞分离。 5、加入 3—5ml培养液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制剂)。 6、静置 5—10分钟,使未分散的组织块下沉,取悬液加入到离心管中。 7、1000rpm,离心 10分钟,弃
,1100rpm(大约220g),离心10min,因为我需要细胞很大的密度,所以我仅仅加入100μl培养基在离心管的底部。细胞竟然只剩下0.5x106。我的细胞丢失是否因为很多细胞粘在离心管壁上没有沉到底端? 答:你用的是15mL的离心管来离心的细胞吗?只用了100uL的悬液?离心完后需要弃去上清吗?如何弃的上清?如此较大的细胞密度、微量(100μL)的体积在移取和计数时应该误差会很大吧?!可能细胞在转移的过程中粘在移液器或离心管壁上了造成了丢失。1100rpm(大约220g),离心10min应该
得特异活性掺入,干燥后就可激发荧光,从而简化了图象获取过程。我们取得良好结果的其它荧光染料包括R110 (Perkin Elmer)、TAMRA (Perkin Elmer)和SpectrumOrange(Vysis)。 oligo-dT和随机引物逆转录标记:所有试剂应经过灭菌及DEPC处理。RNA溶于10µl水中,该溶液应包括一些对照RNA(参见本文后半部分)。加2.5µl(6µg)引物(20-mer oligo-dT,anchored oligo-dT,random hexamer
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