猪流行性腹泻病毒/传染性胃肠炎病毒双重荧光RT-PCR检测试

产品名称：猪流行性腹泻病毒/传染性胃肠炎病毒双重荧光RT-PCR检测试剂盒

规 格：50T/盒
反应体积：25μL
试剂类型：液体

 

【检测原理】本试剂盒根据荧光 PCR 技术原理，针对 PCR试剂盒设计特异性引物和 Taqman 探针，通过荧光 PCR 检测仪进行检测，从而实现对 PCR试剂盒的检测。

 

猪流行性腹泻(Porcine Epidemic Diarrhea，PED)是由猪流行性腹泻病毒(PEDV)引起的一种急性、高度接触性肠道传染病，对养猪业的危害极大，所以及早确诊对该病的防治具有特别重要的意义。猪流行性腹泻病毒的传统诊断方法主要有病毒的分离鉴定、免疫荧光抗体试验、免疫电镜观察和ELISA等方法。但这些方法操作过程繁琐、操作难度大，所需要时间较长，专一性不强因此建立一种快速、高灵敏度的诊断方法对防治PEDV感染是十分必要的。

PEDV属于冠状病毒科(Coronaviridae)冠状病毒属(Coronavirus)，其基因组为单链正股RNA，其中膜蛋白(M)基因高度保守。本研究根据PEDV的M基因设计特异性检测引物，提供了PEDV的快速、灵敏的鉴别诊断方法，采用RT-PCR技术检测疑似感染仔猪粪便或肠道组织样品中的PEDV。

 

【使用方法】

一、试剂准备（在试剂准备区进行）

1. 取出包装盒中的各组分，室温放置，待其完全融化，混匀后备用。

2. 根据待测样本、阴性对照、阳性对照的数量，按下表1单反应体系配制方法，取相应量的试剂，充分混匀成PCR-Mix，按照20 μL/反应分装到PCR反应管中，瞬时离心后备用。

表1：单反应体系配制方法

试剂	反应液	混合酶
用量	19 μL	1 μL

二、样本准备（在样本准备区进行）

1. 使用商品化的病毒核酸提取试剂盒，参照说明书进行操作，提取好的核酸样本如不能立即检测，建议-70℃以下保存。

2. 取出样本后混匀，将阴性对照、待测样本、阳性对照各5 μL加入到PCR反应管中混匀。

3. 盖上管盖，2000 rpm离心30秒。

4. 将PCR反应管转移到扩增区进行上机。

三、PCR（在核酸扩增区进行）

1. 将上述PCR反应管按照实验布局依次放入PCR仪对应检测孔内，并记录顺序。

2. 按表2设置PCR扩增循环参数。

表2：PCR扩增相关参数

体系		反应体系设为25 μL
信号采集		选择FAM通道检测H5亚型； 选择CY5通道检测H7亚型； 选择ROX通道检测H9亚型。
PCR 反应 条件	阶段	条件	循环数
	逆转录	50℃：30 min	1
	预变性	95℃：5 min	1
	PCR	95℃：15 sec	45
		60℃：30 sec （此阶段结束时采集荧光信号）

 

【结果分析】

表3：结果分析表

实验成立 条件	阴性对照	三通道Ct＞38或者No Ct，线形为直线或轻微斜线，无指数增长期。
	阳性对照	三通道Ct≤30且出现典型的S型扩增曲线。
样本结果 判定标准	H5亚型 阳性	FAM通道Ct≤35且出现典型的S型扩增曲线。
	H7亚型 阳性	CY5通道Ct≤35且出现典型的S型扩增曲线。
	H9亚型 阳性	ROX通道Ct≤35且出现典型的S型扩增曲线。

 

结果可疑	任一通道35＜Ct≤38，建议复测，复测结果仍为可疑，且出现明显指数增长，判为阳性。否则为阴性。
结果阴性	Ct＞38或者No Ct，线形为直线或轻微斜线，无指数增长期。

 

 

【注意事项】

1. 使用本试剂盒的实验室，应严格按照国家有关基因扩增检验实验室管理规范进行管理。

2. 各区域物品均为专用，不得交叉使用，以免污染。检测结束后，应立即对工作台进行清洁消毒。

3. 吸取反应液时，应尽量避免产生气泡。上机前，应注意检查各反应管是否盖紧，以免液体蒸发造成结果不准确。

4. 检测过程中使用过的吸头，应直接打到盛有10%次氯酸的废液缸内，检测结束的PCR反应管，切忌开盖，并与其他废弃物品一同灭菌后丢弃。

5. 工作台及各种实验用品应定期用10%次氯酸、75%酒精或紫外灯进行消毒。

6. 试剂使用前应在常温下充分融化并混匀。不同批号的试剂请勿混用，并在有效期内使用。

 

【储存条件与有效期】

试剂盒应置于-20℃冷冻避光贮存；

试剂盒保存有效期为12个月；

试剂盒反复冻融次数不宜超过5次。