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产品货号:L1500P
存储条件:4℃保存 6 个月,-20℃长期保存。
产品说明
15000bp Plus DNA marker 为保存于 1× Loading Buffer 中 的DNA 溶 液。由500 bp,1000 bp,2000 bp,3000 bp, 4000 bp,6000bp,8000 bp,15000 bp, 共 8 条线状双链 DNA 片段组成,条带范围适用于大范围 DNA 片段大小的确定。5 μl 产品中 ,4000 bp 条带含量约80 ng,其他条带含量约 30 ng。
该产品在正常使用过程中可以在室温下稳定存放,不会出现条带降解、弥散等情况;此外,DNA 条带清晰锐利,凝胶泳道背景较好,亮度较高且均匀。

使用方法
1. 取 5 μl DNA Marker 加入琼脂糖凝胶的加样孔中进行电泳(如果加样孔较宽,可适当增加上样量)。
2. 建议用 0.7-1.0% Agarose( 货号:AG0100), 电压 5-10 V/cm, 1×TAE缓冲液电泳。注意及时更换电泳缓冲液并使用新制备的凝胶,以达到理想的结果。
3. 通过 CelRed DNA Stain( 货号:CR001) 进行染色 , 或者用其他的核酸染料进行染色,在紫外灯下观察电泳条带。
注意事项
1. 本产品已保存在 1× Loading Buffer 中,可直接进行电泳,使用方便,电泳图像清晰;
2. 本产品中使用琼脂糖凝胶浓度建议为 0.7-0.8%,最好不要超过1.0%。凝胶浓度过高时,大片段条带不易分离,且不适合用 TBE 电泳缓冲液;
3. 使用含有 CelRed DNA Stain 的琼脂糖凝胶进行电泳检测时,将溴酚蓝条带电泳到凝胶长度约 2/3 的距离即可。
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文献和实验【求助】492bp片段跑胶比500的marker要大(如图)!为何?
stb1986 PCR产物492bp(经过测序验证),可是多次琼脂糖电泳条带却明显比500的marker要大(如图),不知原因是什么呢?GC比例为30%,可是G+C与A+C的分子量差别不大啊,请问有战友试过类似情况不?原因何在?谢谢! liupeiyanxiaohai 我也遇到过, 认为是maker不准,可以换个marker试试 qst1981 我也遇到过一样的问题 我想
1、Marker选择标准(1)应选择在目标片段大小附近ladder较密的marker,这样对目标片段大小的估计较准确。(2)所选marker应能清楚反映目标片段的大小,且次要片段大小也能反映出来。如作酶切鉴定时,目的片段和切后载体片段最好能在同一个marker中反映出来,若二者不能兼顾,将前者作为主要考虑要素。2、常见问题分析Q:为什么marker条带非常模糊,无法辨别具体条带?A:出现上述情况,可能有以下几个原因:1. marker条带出现了降解。请确保在使用过程中避免核酸酶污染;2. 电泳
DL5000 DNA Marker.doc
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