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β-Actin酶联免疫检测试剂盒

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  • 10ng/mL
  • TD-BK3201
  • 2026年02月18日
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    • 供应商

      Bioyears

    • 库存

      999

    • 样本

      细胞,血液,组织,病毒

    • 适应物种

      Human; Mouse;Rat

    • 应用

      科研检测

    • 检测方法

      ELISA

    • 检测范围

      10ng/mL

    • 规格

      96Test

    β-Actin 酶联免疫检测试剂盒说明书

     

    一、试剂盒简介

     
    此定量检测人β肌动蛋白(β-actin) 酶联免疫试剂盒,采用抗β-Actin的配对抗体,分别作为包被抗体和检测抗体,组成双抗体夹心ELISA检测试剂盒。本试剂盒最低可检测到10ng/mL的β-Actin。
     

    二、试剂盒组分

     

    试剂盒组分

    96孔板配置

    保存

    使用说明书

    1份

     

    酶标包被板

    1×96孔

    2-8℃保存

    β-Actin标准品

    100 uL×1管

    -80℃保存

    检测抗体

    50 uL×1管

    -80℃保存

    HRP-羊抗鼠二抗

    10 ul×1管

    -80℃保存

    TMB底物显色液

    13 mL×1瓶

    2-8℃保存

    显色底物终止液

    13 mL×1瓶

    2-8℃保存

    样品稀释液

    13 mL×1瓶

    2-8℃保存

    抗体稀释液

    13 mL×1瓶

    2-8℃保存

    洗涤液(10倍浓缩)

    30 mL×1瓶

    2-8℃保存

           

    三、保存

     

    本试剂盒各组分按标签温度保存有效期6个月

     

    四、所需仪器

     

    酶标仪(波长450 nm),10 μL、100 μL、1 mL移液器,300 μl多道移液器,移液器吸头、37℃恒温水浴箱。

     

    五、操作步骤

     

    1、actin标准品溶液配制。取8个新EP管,分别标记1-8#。在1#管中加入990μL样品稀释液,2-8#管中分别加500μL样品稀释液。加入10μL标准品(100 ug/mL)到1#管中,剧烈振荡。从1#管中取出500μL加入2#管,剧烈振荡。同样方法完成3-8#管的稀释(1-8#管actin浓度分别是1000、500、250、125、62.5、31.25、15.625 ng/mL)。稀释好的标准品建议在15min内使用。另外,标记一个新EP管为B0(maximum binding,0 ngmL),加入500μL 样品稀释液。

     

    产品细节图片1

     

    2、将浓缩洗涤液用蒸馏水做10倍稀释。配好的洗涤液可室温保存3个月(但不能超出试剂盒的保质期)。

    3、取出包被有抗β-actin的96孔酶标板在室温放置回温。标准品各浓度做平行两孔,100 μL/孔加入酶标板中。加待检样品各两孔,100 μL/孔。37℃孵育1小时。用洗涤液洗涤三遍,拍干。

    4、将检测抗体用抗体稀释液做1:500稀释,加入各反应孔,100 μL/孔(检测抗体用多少稀释多少,现用现配)。加样过程须在15 min内完成。置37℃孵育1小时,用洗涤液洗涤三遍,拍干。

    5、将HRP-羊抗鼠二抗用抗体稀释液做1:5000稀释,加入各反应孔,100 μL/孔。置37℃孵育1小时,用洗涤液洗涤四遍,拍干。

    6、用移液器加TMB底物显色液100 μL/孔,室温20–24℃避光反应10 min,请勿震荡。

    7、用移液器加终止液50 μL/孔,稍微震荡5s混匀。

    8、在酶标仪450 nm波长处读数。

     

    六、注意事项

     

    1、如样品中β-Actin含量高于1000 ng/mL,可将样品做适当稀释。

    2、样品如为冻干制剂,应用样品稀释液充分溶解混匀。

    3、反应时应将整板放入洁净的密闭空间中,为防止反应孔中落入异物。

    4、洗涤拍干后,应消除各孔内残余的气泡。

    5、开封后,将未使用的板条放回加入干燥剂的密封塑料袋中,置4℃密闭保存。

    6、在操作过程中,所使用的移液器吸头、洗涤机(瓶)、器皿等均应严格避免被污染。

     

    七、结果判定

     

    1、实验有效参数。实验结果须满足以下有效参数为成立:

    0 ng/ml OD值≤0.1; 1000 ng/ml OD值≥0.80; R2≥0.98;

    2、计算。在EXCEL里面以标准浓度为横坐标,消零OD值为纵坐标作散点图,添加趋势线,再显示曲线方程和R2值,将检测样品OD值消零处理后带入直线方程计算对应的浓度。

     

    标准浓度

    OD1

    OD2

    平均值

    消零OD

    1000

    0.972

    0.937

    0.9545

    0.8635

    500

    0.615

    0.721

    0.668

    0.577

    250

    0.458

    0.386

    0.422

    0.331

    125

    0.388

    0.243

    0.3155

    0.2245

    62.5

    0.207

    0.218

    0.2125

    0.1215

    31.25

    0.157

    0.148

    0.1525

    0.0615

    15.625

    0.113

    0.118

    0.1155

    0.0245

    0

    0.090

    0.092

    0.091

    0

     

    产品细节图片2

     

    3、判定。在标准曲线中,设OD 0–500 ng/mL为区间A;OD 500–1000 ng/mL为区间B;大于OD 1000 ng/mL为区间C。

    3.1 如测得的OD值小于标准曲线中15.625ng/mL对应OD值,则β-Actin含量测定结果计为小于15.625 ng/mL。 

    3.2 如不同稀释浓度的样本测得的OD值均位于区间A,则最终结果计算取其最低稀释度的测定值。

    3.3 如不同稀释度的测定值均位于区间B或同时位于区间A和B或同时位于区间B和C,则取其最接近OD 500 ng/mL的测定值。

    3.4 如不同稀释度测定值均位于区间C,则需将样本做进一步稀释测定,使其测定值居15.625 – 1000 ng/mL所对应的OD值区间,计算方法按上述3.2 – 4。

    3.5 如高稀释度测得OD高于低稀释度或未稀释的样本OD,则可能是操作失误或样本中β-Actin含量过高(HOOK效应),需重试或调整稀释度。

    3.6 最终结果要考虑稀释因素(β-Actin实际含量=计算值×稀释倍数)。

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